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标题:【求助】毕赤酵母表达后跑SDS-PAGE出现奇怪的条带

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【求助】毕赤酵母表达后跑SDS-PAGE出现奇怪的条带


我用毕赤酵母X-33表达大小约为66KD的糖化酶,诱导7天后,将上清经过TCA浓缩后跑SDS-PAGE,在预期的位置没有出现目的条带,但在大约100多KD处却出现了一条比较浓的带,量也较大,并且空白对照没有此条带。因为怀疑是由于二硫键形成的二聚体,所以我又用巯基乙醇将样品处理了一下,基本上没有这条带了,只能看到比较模糊的印,但是依然没有我想要的目的条带。这个奇怪的现象困扰了我很久,问过很多人都无法解释。如果说这条带是酵母自身分泌的蛋白,那为什么空白对照就没有呢?而且毕赤酵母表达时,目的蛋白如果有表达的话,应该占到总蛋白的90%左右,以这条带的量来看,我感觉不会是背景蛋白,什么背景蛋白会占这么大的优势,达到这么大的量呢?我感觉这就是特异带,因为空白对照明显没有此带,但是它的位置就是不对!请各位酵母表达的高手指点我一下!
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avi317[使用道具]
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可能是被修饰了,你最好是吧电泳图传一份上来看看
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qianqin1977[使用道具]
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诱导7天后,将上清经过TCA浓缩后跑SDS-PAGE,
如果说这条带是酵母自身分泌的蛋白,那为什么空白对照就没有呢?

=====================================================

空白对照是什么?未诱导的上清?是否和诱导上清一样经过了TCA浓缩?
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qianqin1977[使用道具]
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而且毕赤酵母表达时,目的蛋白如果有表达的话,应该占到总蛋白的90%左右,

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说说而已。
一般毕氏酵母自身分泌的蛋白是不多。
但表达的外源蛋白,在我们通常的表达水平下,也绝对达不到总蛋白的90%。
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没有经过巯基乙醇处理的那张电泳图没有留底,有的这张是经过处理之后的,就是每900微升样品里加了10微升的巯基乙醇,然后才进行的TCA浓缩,这张图从右至左依次是蛋白Marker,空白对照,空白对照,168h,144h,120h,96h,72h,48h,24h。现在这张图中那条带已经看不太清楚了,原来那张照片中,那条奇怪的带特别浓。说明一下,我的空白对照是转化了空质粒载体的酵母菌,一样的条件下同时进行的诱导,同样经过了TCA浓缩。我把照片发上来,请老师们帮我分析一下。


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我说错了,是从左至右,不是从右至左,最上面那条Marcker应该是97KD左右。
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原来那条奇怪的带就是我用红色圈出来的位置。


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另外,我还有个问题要问一下各位老师,我这次又重新进行了一次诱导,这次我是严格按照毕赤酵母表达手册上做的,就是我先用50mL含甘油的培养基将酵母菌养到OD约为4左右,然后用原培养体积5分之一的含有甲醇的诱导培养基将菌体沉淀重悬,也就是10mL,使使OD值在20左右,然后开始诱导表达,但是因为我出了跑胶,还要进行酶活的测定,所以我每天取样2mL。但这样的话,再算上培养基每天蒸发的量,估计还没有诱导完,发酵液就干了。所以我每天在取样2mL后,又补加2mL左右的培养基,也就是说让培养基的体积基本保持在10mL ,然后添加10mL的0.5%的甲醇。考虑到补加的培养基中叶含有甲醇,我怕补多了,所以就配了不含有甲醇的诱导培养基。但有的人说,补加培养基很不好,会对蛋白的表达产生不利的影响,是这样吗?那是不是说我这一次依旧表达不出来呢?
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从你的电泳图上看,24-48小时表达应该是可以的了。是外泌表达还是什么?如果是外泌表达的话也太不纯了。糖化的程度怎么样?如果高糖化的话,电泳完全有可能跑的很慢,不能用marker来确定蛋白。
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在这次表达之后,我觉得是没有表达,所以又重新诱导了一次,上次我采用的是Mut+的诱导方案,我这次采用的是Muts的诱导方案,结果又出现了这条奇怪的带,我用的是毕赤酵母分泌表达一个大约66KD的糖化酶,这次的带很漂亮,但是比我的目标蛋白也大太多了,但我用软件分析了一下,我的蛋白中并无糖基化位点啊,但我觉得应该不是酵母自身的蛋白,因为自身蛋白怎么会有这么高的浓度啊!而且带这么明显,也很单一,并且还挺符合酵母诱导的规律,72h和96h的时候量很大。下面的图就是我这次新诱导的蛋白电泳图,从左到右依次是24h、48h、72h、96h、120h、144h、空白对照和Marcker(最上面的是97KD)。我现在实验已经无法进行下去了,因为根本找不到原因,也根本无法确定我的蛋白是不是表达了,现在根本就不知道这条奇怪的带是什么,真的很着急,请高手指点我一下!


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