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标题:【求助】SDS-PAGE上样量问题,急!

锤子[使用道具]
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【求助】SDS-PAGE上样量问题,急!


想做做单向SDS-PAGE,用的是伯乐的Protean II xi Cell大电泳仪,梳子为15个齿的,请问上样量大概要多少ug?多少ul呢?刚看了Instrument Manual没找到答案,期待解答!
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deducte[使用道具]
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做单向话每个上样孔上50ug的蛋白就可以了,上样的最大体积数和你的垫片厚度以及梳子大小有关系,不过尽量不要加太满不然就容易扩散了,所以你的蛋白浓度浓的话是可以用2×上样buffer,如果比较稀的话就要用5×上样buffer。另外如果你的泳道有空的话最好也加上相同的上样buffer,条带就不容易跑歪了。
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锤子[使用道具]
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哦,谢谢
忘了说了,我要做考染,是大的电泳仪,50ug就够了吗?
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daod[使用道具]
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上样的蛋白总量应不使电泳条带发生变形,一般不应超过30ug/mm2(应该是平方毫米,不知道怎么把角标弄上去)载荷面,比如150ug相当于5mmx1mm的胶槽。你可以根据你的凝胶面积和梳子的大小计算一下每个孔的上样量。
在做之前最好测一下蛋白浓度!
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veiwu[使用道具]
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我想问一下,上样之前测蛋白浓度用哪种方法最好啊?是考马斯亮蓝法还是直接280nm紫外测定啊!我前几天用280nm紫外测的,根据测定结果按照每个上样孔100ug点样可基本上没有蛋白显带,蛋白的量还是不够啊?为什么?
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锤子[使用道具]
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考马斯亮蓝法好于直接280紫外测定,我觉得。
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cocacola[使用道具]
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考马斯亮蓝比较精确,适合微量的
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jingling845[使用道具]
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我建议你在准备样品时,在每个样品里加5微升5摩尔氯化钠.我一般是考马斯亮篮染加10微克蛋白,印染加5微克蛋白就足够了.
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@花开花落@[使用道具]
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我想知道加氯化钠的原因是什么啊?点样和测定蛋白质浓度时都加吗?
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jujuba[使用道具]
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我在作SDS-PAGE电泳时做过对照,上同样的量,加了Nacl的就是清楚,加Nacl只是作电泳处理样时加,测定蛋白质浓度不用加。
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