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标题:【求助】】Western blot省钱大攻略

nvdabing[使用道具]
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【求助】】Western blot省钱大攻略


也做了一段时间的western blot了,中间经历了波波折折,从一开始的手忙脚乱,到现在的灵活自如,还是有不少体会的~~一个体会是WB可以省钱,只要省的是时机,完全可以用更廉价的代价做出超值的结果。
废话少说,我先说说自己的几点体会吧,也算抛砖引玉。
1)SDS-PAGE电泳缓冲液可以反复用:只要保证内槽的缓冲液是干净的,外槽用旧的缓冲液就可以了;
2)半干转膜用的3MM滤纸也可以反复用:一定要标记好3MM滤纸的上下面,只要上下不颠倒就可以用10几次;
3)大部分一抗是可以回收的,回收后保存在4度,1个月内用一般没有问题;
4)NC膜可以剪得很小,只要你的目的条带包括就可以了。
DXY高手如云,希望大家提出更多的省钱策略,把WB做好。
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fei1226com[使用道具]
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这个话题挺好的!希望大家都能谈谈自己在做WB中的体会与心得。当然这个贴的主题是“省钱”和“省时间”!

做Western Blot的时候,蛋白电泳—转膜—封闭—抗体—显色这几个步骤是环环相扣,任何一个环节出了问题,都会得不到好的结果!很多时候大家都会把一部分责任归咎到自己没用好的试剂和耗材上面。诚然,好的试剂能为带来好的结果助一臂之力,但不一定是决定性因素。以往我们集中讨论过wb试验技巧的问题,但在wb中如何做到用物美价廉的试剂做出好的结果似乎并没有这类讨论,希望大家在这里能把自己的心得和体会介绍一下,加分从优!

1. 不反对广告帖,但要说产品好,最好能提供具体的试验结果图!
2. 谈体会的朋友,也可以把自己的试验图贴上来。
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fei1226com[使用道具]
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1. 对于刚做wb的朋友来说,提蛋白跑电泳是第一步。很多人会选择自己配制裂解液,以往版子里面经常看到这类帖子,对于第一次接触wb的朋友来说,买商品化的裂解液不见的是浪费钱,但肯定可以省时间。(当然对于裂解液有特殊的情况除外了)

2.同一张PVDF膜用一,二抗洗脱液洗脱后,加入另外的一抗,可以检测多个目的蛋白。省点pvdf膜的钱,但可能要自己配洗脱液,或者可以买现成的pvdf膜的Stripping Buffer。但不是用的很广泛!

.....

还有很多类似的情况。
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dog002[使用道具]
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我也说几点自己的体会:
1,配胶很多人是按照分离胶缓冲液 1.5mol/L Tris•HCl(pH8.8),浓缩胶缓冲液 0.5mol/L Tris•HCl(pH6.8),10%SDS 分开加的,其实这样麻烦,因为这三个在胶里的终浓度是不变的,分别是0.375M,0.125M和0.1%,因此可以把SDS直接分别加进分离胶以及浓缩教缓冲液,配成4x的BUffer直接配胶。
2,WB里面现用现配的有APS,脱脂奶粉封闭液,1抗2抗以及洗脱液,其他比如PBS/PBST,running buffer,trans-buffer,考马斯/立春红等都可配成高倍数的母液储存,用时稀释。
3,分离胶聚合时间长点好,因此可以提前一天配好封存后4度过夜,省时间。
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xue258[使用道具]
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支持一下版主和楼主,楼主和版主说的很多,受教良多,我也补充几点

1、一抗二抗都可以回收,我平时做都是每块膜5ml,泡膜,然后摇床上摇,结合充分,抗体太少0.5-1ml,只能孵贴,抗体结合不充分,肯定影响效果,我的做法虽然看似浪费,都是抗体可以回收,4度保存1-2周,一直做该抗体的话,其实比你那每次配0.5-1还划算,而且更容易做出结果

2、同时做几个蛋白,如果分子量差不多,可以同时跑胶,如果二抗相同那就更加好了,第二天加二抗就不会混乱

3、电泳槽和转移槽建议用后冲洗,特别是转移槽,一定要水跑过夜,至少几个小时,因为转移液里的甲醇和tris都有腐蚀作用,槽里的铂金丝可比黄金还贵哦

4、一膜做多个因子,做过,不过没做出来,个人经验是:可以时一下,如果做出来,那你就省时省钱,如果做不出来,那试一下就可以了,不然浪费时间和钱,不推荐广泛使用,爆出来的背景也不好,条带肯定也没有新鲜的膜好
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nvdabing[使用道具]
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呵呵,希望大家响应啊,毕竟不是每个实验室都很富有的,希望集思广益,不断改进WB,最后整理出dxy特有的WB省钱省时超值protocol~~~

还有预染marker问题:
预染marker一般都很贵,尤其是伯乐等公司的,所以购买任何一家公司的预染marker都要在建议的上样量之后进行梯度稀释,如:建议5ul/lane,可以用3ul/lane,2ul/lane,1ul/lane,这样做一次预实验,一般是稀释一倍还可以用的。
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非常好的话题,其实前面我也有讨论过这个话题,比如抗体如何回收,或者用较好的发光试剂盒节约抗体等等。今天我来说一个最近才用的方法,感觉挺好的:
购买的NUNC公司的这种方形细胞培养板,其实不贵,但是我建议最好几个实验室一起买,我买的100个/800RMB,直接美国空运过来的(国内代理)。

每次一个孔中加入1-2ml抗体稀释液即可充分浸润PVDF膜。自我感觉非常方便,可以反复使用。而且对于比较窄的膜,完全可以每个孔中放2-3条PVDF膜。我们都是按照marker剪开不同的抗体孵的。算下来真是太便宜了。效果不错,但是注意最好是买未处理表面的那一种。


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2013-11-27 14:53
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feima+[使用道具]
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呵呵,希望大家响应啊,毕竟不是每个实验室都很富有的,希望集思广益,不断改进WB,最后整理出dxy特有的WB省钱省时超值protocol~~~

还有预染marker问题:
预染marker一般都很贵,尤其是伯乐等公司的,所以购买任何一家公司的预染marker都要在建议的上样量之后进行梯度稀释,如:建议5ul/lane,可以用3ul/lane,2ul/lane,1ul/lane,这样做一次预实验,一般是稀释一倍还可以用的。

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对于预染marker稀释之后跑胶的效果,8529334 朋友能否提供相关实验的结果图具体的看看呢?
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我是新手,想问一下大家几个问题:
先谢谢啦
1)回收的一抗下次用的时候需要补加抗体吗?加多少比例合适?
我的是两个santa的抗体,分别用1:500和1:300
2)我的strip buffer配方是1M PH6.8 tris-HCL 6.25ml
10%SDS 20ml
B-巯基乙醇 0.7ml
双蒸水补足到100ml
为什么strip时室温30min上次杂的抗体洗不掉,
50度水浴30分钟的话杂内参都出不来了?
3)santa的GAPDH稀释多少合适?做过一次1:1000没出来。
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abc816[使用道具]
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我也说几点自己的体会:
1,配胶很多人是按照分离胶缓冲液 1.5mol/L Tris•HCl(pH8.8),浓缩胶缓冲液 0.5mol/L Tris•HCl(pH6.8),10%SDS 分开加的,其实这样麻烦,因为这三个在胶里的终浓度是不变的,分别是0.375M,0.125M和0.1%,因此可以把SDS直接分别加进分离胶以及浓缩教缓冲液,配成4x的BUffer直接配胶。
2,WB里面现用现配的有APS,脱脂奶粉封闭液,1抗2抗以及洗脱液,其他比如PBS/PBST,running buffer,trans-buffer,考马斯/立春红等都可配成高倍数的母液储存,用时稀释。
3,分离胶聚合时间长点好,因此可以提前一天配好封存后4度过夜,省时间。

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实验室一直采取储备液的方法,省了很多容器和配试剂的时间

SDS加到缓冲液中我没试过,但是一次不小心把SDS放冰箱了,结果析出好多结晶,缓冲液是放冰箱的,加上SDS的话有没有同样的析晶问题呢?或许浓度小点没关系?

有一次配了胶没跑电放冰箱了,明天跑胶结果条带特别难看,堪比鬼带,不知是不是浓缩胶分离胶同时放冰箱的问题。只能没跑完就停了,重新洗板,干燥,配胶,上样。
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