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标题:【求助】用胰酶收集细胞的注意事项?

静夜思[使用道具]
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【求助】用胰酶收集细胞的注意事项?


最近一段时间在提心肌细胞蛋白,收集细胞时先用胰酶消化下来后统一加裂解液,但是蛋白浓度很低。分析可能是收集的时候胰酶作用时间太长(我是每空家2ml胰酶,直至细胞全部消化下来)。请问胰酶如果长时间作用心肌细胞,是否会影响心肌细胞蛋白含量!!! 最近一直因为提不出蛋白而睡不好觉,因为每次辛辛苦苦做好几天培养出的心肌细胞,最好却提不到蛋白,好伤心啊!恳请大家帮忙!!!
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你用的是六孔板还是十二孔板,我用的是六孔板,每孔胶300微升胰酶,消化5-6分钟,我怀疑你是不是胰酶加多了,细胞都裂解了
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太好了,找到和我做一样事情的人了!
我用的是六孔板。请问,每孔用300微升胰酶(我用的浓度是0.25%),消化5-6分钟后,吸出的胰酶要不要?您的离心转数和时间?另外裂解液(我用的碧云天的),您作用多长时间?
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QUOTE:
原帖由 静夜思 于 2013-12-7 17:36 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

太好了,找到和我做一样事情的人了!
我用的是六孔板。请问,每孔用300微升胰酶(我用的浓度是0.25%),消化5-6分钟后,吸出的胰酶要不要?您的离心转数和时间?另外裂解液(我用的碧云天的),您作用多长时间? ...

酶没有那么厉害,作用细胞几分钟不可能降解很多蛋白,最多是一些ECM,你用了多少裂解液去裂解?这个才是决定浓度的重要因素。
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对了我想起来了,我胰酶消化得有15分钟或更长时间!我裂解液按照六孔板每孔加20微升加的!!!用的是碧云天的BCA蛋白浓度测试盒。吸2微升蛋白样品,加18微升的PBS。
现将过程叙述如下:
1.六孔板中培养液弃去(用不用留着),胰酶(0.25%)消化六孔板里的细胞,直到80%消化下来为止(大约得15分钟或更长,时间是不太长了,胰酶水解心肌细胞内蛋白?)
2.吸各孔的胰酶,然后离心(1200r/min,10min).
3.PBS洗两遍细胞,然后搜集到一个试管中
4.加裂解液,每孔20ul,冰上裂解5分钟(说明书说几秒即可,园子里有人说30min)。
5.然后移至EP管中,14000r/min,5分钟。
6.测蛋白浓度
请大家帮忙分析原因,嗷嗷感谢!!!
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回复 #5 静夜思 的帖子

我不能说肯定排除胰酶的作用,但我养细胞几百种,用过的胰酶以L来计,还没听过胰酶消化30min可以把细胞内蛋白消化掉的。因为基本上胰酶是不可能破细胞膜的。常规细胞室温消化,15min也不少见,细胞都能存活。

你这个protocol非常诡异,冰上裂解的这种protocol,应该是用的非sds去垢剂,5min裂解,那么你离心,之后,主要骨架蛋白都在沉淀里,你总不会去上清去测浓度吧,那样你不会有多少蛋白的,因为细胞的80%以上的蛋白在5min的冰上裂解环境下,都会在14000rpm离心后的沉淀里,因为这么方法,这么短时间裂解:
1,细胞核可能还没破呢,核蛋白全在沉淀里
2,细胞质骨架蛋白还没完全溶解呢,你离心得到的都是细胞质可溶蛋白,含量自然很低。

建议你延长裂解时间,4度旋转1hr,或者更换裂解protocol,直接sds裂解。另外,还要排除你这个裂解液对测定方法的干扰。
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楼主问一个问题:用胰酶消化细胞会不会将结合的坑体消化下来?
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QUOTE:
原帖由 zranqi_1 于 2013-12-7 17:37 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
楼主问一个问题:用胰酶消化细胞会不会将结合的坑体消化下来?

一般不会,除非这个抗体的可变区本身有很强的trypsin位点,而且还暴露在外面,这个概率太小了。因为一般能结合细胞表面蛋白的抗体,其表位都是构象表位,trypsin也接触不到那些和这些位点结合的区域,也就无法通过降解破坏这个作用了。当然,你要消化个几个hr,那么抗体本身也可能給消化部分了:)
但抗体的结合有可能随着细胞的贴壁性消失,形态变化引起的抗原蛋白变化,导致结合发生变化,这个就不好排除了,要看具体的抗原蛋白的性质了。和骨架锚定比较密切的,有可能受到影响。
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静夜思[使用道具]
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我之所以裂解5min,是因为向我们实验室人员请教,他就是按说明书裂解的,几秒钟,而且蛋白浓度就够了,我看了园子里有说30min的,所以就自己定5min了。
我下次裂解30min,看看怎么样!您说的“4度旋转1小时”转数是多少?
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回复 #9 静夜思 的帖子

很简单的rotator,没有转速的,只是缓慢旋转,大概15s一圈吧。你这个蛋白提了后续做什么实验啊?只有做IP实验,才需要这样冰上裂解操作,一般的wb直接用sds裂解buffer处理就可以了。
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