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标题:【求助】怎样做低分子量蛋白的WB

okhaha[使用道具]
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【求助】怎样做低分子量蛋白的WB


我做的蛋白分子量是6KD,请问配胶浓度和电泳时应注意什么?急!谢谢各位高手!
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lixi559[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 okhaha 于 2013-12-7 22:51 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

我做的蛋白分子量是6KD,请问配胶浓度和电泳时应注意什么?急!谢谢各位高手!

兄弟啊很难,我的是7.5KD,很难做
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purrr[使用道具]
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你好!我做过大约5~10KD的蛋白质的WB,希望提供的意见对你有帮助。应该用Tricine-SDS-PAGE来电泳,普通的变性胶很难分离小分子量的蛋白质;凝胶的浓度为16.5%T和3%C就差不多;最关键的一步是转移后你的PVDF膜一定要在固定液中固定,否则在经过后续处理后小分子量的蛋白质基本上被洗脱或者扩散了,我们通常是在转移完毕后,先用超纯水漂洗一下膜,然后在TBS中过渡清洗5分钟左右,然后用含0.2%戊二醛的TBS固定45分钟,再依照WB的步骤处理后面的过程,后来能得到很好的结果,否则明明蛋白转移到膜上了,后来却消失不见,更不用说免疫检测了。
其它的具体步骤你可以找相关的文献参考。
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birdfish[使用道具]
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0.2%戊二醛的TBS固定45分钟,就是让它在摇床上转来固定么??
我内参和其他的45KD的目的蛋白都做的好好的
就有个15KD的蛋白做偶尔出来而且图还不好用,转完膜后用立春红染也看得到条带但后续就出不来了,胶浓度,蛋白上样量,转膜时间都调整过了,明天试试戊二醛固定了
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vtongli[使用道具]
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我做了一个多月……10KD的快崩溃了,胶是12% 5% 我用自己配的胶,内参很好……目的带居然是一根就像弥散了样。后来去别人那里配了一块胶 ,但背景很深……目的带好像是分开了,但目的带很模糊,看不清趋势……高手帮帮忙,到底是那里出问题了…
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mimili_901[使用道具]
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这里有小分子蛋白检测的具体流程cuturl('http://user.qzone.qq.com/401211813/infocenter')需要的可以看下
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龙小好汉[使用道具]
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用含0.2%戊二醛的TBS固定45分钟,恩,记住了!谢谢!
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TAT[使用道具]
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配胶的时候的甘油是用100%的吗?还是稀释过的哦!
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龙小好汉[使用道具]
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没用过甘油的,用过尿素的。
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mimili_901[使用道具]
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4.1.4 WG ( water + Glycerol):

Water: 58ml

Glycerol: 36ml

Total: 94ml

这个比例稀释的啊
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