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标题:【求助】本人做Western blot一直没有条带出来

youyou99[使用道具]
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1
 

【求助】本人做Western blot一直没有条带出来


本人做WB有一个月了,一直都郁闷着。没有一次出现条带。
现在把我的实验步骤贴出来,希望各位高手能指点一下,提出一些解决方案

1,提蛋白,BCA法检测蛋白浓度30-40微克/微升

2,电泳:0.75的进口板子,每孔上样2微升,80V一跑到底,然后考兰染胶,条带明显,效果比较 好,没有“微笑,皱眉”现象

3,转膜:0.22的PVDF膜,0.25mA恒流,25的分子量转膜25-30分钟,45的分子量转膜45-50分钟,转膜后,可以很清楚的看到maker。但是用丽春红染色,没有看到蛋白条带

4,5%的脱脂奶粉,配方1g奶粉加20mlPBST,37度封闭2个小时

5,孵育一抗,按照点杂交的结果两个抗体均使用1:200的浓度,每张膜上加60微升的稀释抗体
37度90分钟,或者4度过夜

6,用PBST洗3次,每次10分钟

7,孵育二抗,按照1:5000的浓度每张膜上加60微升的稀释抗体,37度50-60分钟

8,用PBST洗3次,每次10分钟

9,用ECL法发光

以上就是我的操作步骤,请各位就怀疑的地方提出疑问,一直没做出来,很是郁闷。。。。
谢谢
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abc816[使用道具]
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2
 

楼主,丽春红染色有没有的话,基本就是转膜的问题了,后面也就没必要做了。

楼主是写错了吧,转膜一般都是100~200mA,另外转膜的时间也短了些,200mA,时间上增加一倍差不多了,先用丽春红染上色再看吧
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楼主是转膜结束后考马斯亮蓝染胶还是转膜之前就染胶了??
转膜之前就染胶似乎不对吧?
考染是非可逆性的染色,染上去就脱不掉,可能影响后面的转膜
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建议循序渐进地做。

首先提蛋白,摸索不同的上样量走电泳,然后用考马斯亮蓝把胶染色,看是否提取出了蛋白,看是否走出了梯度;

然后如果胶上能成功走出蛋白条带,再转膜,转过的膜用立春红染色,看是否转膜成功;同时转过膜的胶再用考马斯亮蓝染色,看转膜效果;

如果能成功转膜,再按照上述条件电泳,转膜,然后用Actin 一抗体染,二抗体染,看能否染出来条带,

如果能成功染出Actin,再用目的蛋白一抗体染目的蛋白,一般要增加抗体浓度,以便成功染出条带
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5
 

你转膜条件错了吧?我们一般都是5mA/cm2

怎么能恒流呢?

时间上倒不觉得短了,我们都是45分钟,都挺好的

另外,我们封闭就室温两小时就行了。如果用快速封闭液,二十分钟足够。
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youyou99[使用道具]
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6
 


QUOTE:
原帖由 DONT 于 2013-12-16 15:49 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

你转膜条件错了吧?我们一般都是5mA/cm2

怎么能恒流呢?

时间上倒不觉得短了,我们都是45分钟,都挺好的

另外,我们封闭就室温两小时就行了。如果用快速封闭液,二十分钟足够。
...

我们用的是湿转法,你们用的是半干吧
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6327555[使用道具]
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7
 

不应该用考染吧,考染就意味着已经固定了,蛋白还能转过膜吗?
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