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标题:【求助】western blot 老师做不出来

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【求助】western blot 老师做不出来

我的情况如下:我的蛋白样品分子量是16KD,我跑电泳是用的15%的胶,跑得很好!而且我用

的是厚胶版,上样量为35微升,样品大概每个孔在15微克的样子,转膜的时候我用的是0.22的

膜(millipore公司的),膜大概是24平方厘米,转膜条件是35mA,45min,我用的是恒流(当

时我看电压大概9v),我看到预染Marker很清楚的转到膜上了,每条带都有,我用的是ECL显色

(碧云天的),别人用这个染色液做很好,我认为染色液应该没问题,转膜完了以后的教我再

拿去用考马斯亮蓝染色,能考到目的条带,但是颜色很浅(比之前不转的要浅很多),所以自

认为是转上去了,可是结果出来图片就是白白一片,什么也没有,高手帮我看看这个过程有什

问题?请帮忙指点一下?感激!
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对了,我用的是半干转,谢谢
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ii077345[使用道具]
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1抗浓度是否过低?Maker10~25左右的条带膜上是否有清晰,然后可能是由于转膜不充分,目的蛋白部分转至膜上,目的蛋白表达是否高?
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箭头儿[使用道具]
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一抗是否有postive control cell lysates如果有,和你的样品一起上样,做Western blot, 就能很快知道原因。其实WB no signal 的原因非常多,下面是我随便google一下在Abcam网站上查到的可能原因,希望对您有所帮助。good luck!

Possible reasons for No signal
1The primary antibody and the secondary antibody are not compatible.
Use secondary antibody that was raised against the species in which the primary was raised (e.g primary is raised in rabbit, use anti-rabbit secondary).

2Not enough primary or secondary antibody is bound to the protein of interest.
Use more concentrated antibody. Incubate longer (e.g. overnight) at 4ºC.

3Cross-reaction between blocking agent and primary or secondary antibody.
Use a mild detergent such as Tween20 or switch blocking reagent (i.e. commonly used blocking reagents are milk, BSA, serum or gelatin).

4 The primary antibody does not recognize the protein in the species being tested.
Check the datasheet or perform a ClustalW alignment to ensure your antibody should react with the target protein; Run the recommended positive control.

5Insufficient antigen.
Load at least 20-30 μg protein per lane; Use protease inhibitors; Run the recommended positive control.

6 The protein of interest is not abundantly present in the tissue.
Use an enrichment step to maximize the signal (e.g. prepare nuclear lysates for a nuclear protein, etc.).

7 Poor transfer of protein to membrane.
Check the transfer with a reversible stain such as Ponceau S; check that the transfer was not performed the wrong way; if using PVDF membrane make sure you pre-soak the membrane in MeOH then in transfer buffer.

8 Excessive washing of the membrane.
Do not over wash the membrane.
Too much blocking does not allow you to visualize your protein of interest.

9 Instead of using 5% milk in the antibody buffers try removing the milk or using 0.5%. Switch blocking
reagents or block for less time.

10 Over-use of the primary antibody.
Use fresh antibody as the effective concentration is lowered upon each re-use.

11 Secondary antibody inhibited by sodium azide.
Do not use sodium azide together with HRP-conjugated antibodies.

12 Detection kit is old and substrate is inactive.
Use fresh substrate.
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就是Marker10-25的条带在膜上很清晰哦,我现在不知道我的实验过程到底哪有没有什么大的问题?
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箭头儿[使用道具]
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上面有12种可能的原因,现在看来不是转膜的原因,在其它原因找找看。
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7
 
我是没有阳性对照,我的蛋白不是细胞里提出来的,是我自己构建载体表达出来的,你上面的原因我都看过了,就是阳性对照这个应该怎么设置呢?
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nn255[使用道具]
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用上面提到的阳性对照的蛋白(如果你有),在marker旁边跑一个孔,首先你要保证你能把阳性对照曝出来,才能证明至少你的实验步骤没有问题。
如果你没有阳性对照,建议你逐步提高一抗浓度,和曝光时间。如果还是没有条带,背景弱的时候可以提高二抗浓度。
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redbutterfly[使用道具]
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是原核表达的蛋白么??如果是 先考马斯亮蓝染色看看诱导出来没有

其次加大上样量和一抗浓度,二抗也可以稍微提高些。

可能的原因很多,先这么试试。
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dhpbj[使用道具]
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定影显影液是否失效?
你可以先试试曝光过程有没有问题,定影显影有没有问题,拿胶片直接曝光,然后去试定影显影有无问题
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