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标题:【求助】磷酸化蛋白WB结果不是非特异条带就是白板

shenkunjie[使用道具]
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【求助】磷酸化蛋白WB结果不是非特异条带就是白板


最近一直做一种酪氨酸磷酸化蛋白,电泳、转膜基本没有问题,试过5%脱脂奶粉和5%BSA封闭2h,一抗(CST,5%BSA-TBST配,推荐1:1000)做了几个梯度1:1000,1:2000,1:4000,二抗(博奥森,配法同一抗)1:4000,1:5000,洗膜都是10min*4次,ECL显色,压片最长1h,结果如下:
5%脱脂奶粉封闭2h-一抗1:2000,二抗1:4000,-泳道样的非特异性条带,但是目的蛋白大小的条带较浓
5%BSA封闭2h-一抗1:4000,二抗1:5000-白板
5%BSA封闭5h-一抗1:1000和1:2000,二抗,1:5000-几乎是白板,不过能看到泳道样的轮廓
看过真多相关的帖子还是很迷惑啊
请教各位前辈,尤其是有过类似经验的前辈们,怎么样才能得到理想一点的结果呢?我要调整封闭时间还是抗体比例?谢谢!在线等啊
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fei1226com[使用道具]
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我不是有经验的同学,但我觉得你要调抗体浓度,试着把二抗浓度加大点,不要一抗二抗同时稀释,那样你就发现不了是谁浓度的问题了。或者用脱脂奶封闭,二抗用1:5000试试。我一般封闭一个小时就可以的,我用的是脱脂奶,但后来有一个蛋白出的不太好,我也在寻找帮助呢
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shenkunjie[使用道具]
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谢谢!
之前很多人都说用BSA封闭更好,所以我后几次用的都是BSA,不知道你用脱脂奶1h也是磷酸化蛋白吗?二抗1:5000不变,一抗不同梯度都几乎是白板。
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shenkunjie[使用道具]
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请问谁还有好的建议吗?我实在不知道怎么下一步怎么改变条件了
之前帖子上有人说“封闭液封闭时间不宜过长,否则会置换掉膜上的蛋白”,请问这种说法对吗?
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yjf1026[使用道具]
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你用牛奶封闭的时候,有出条带,那你应该尝试一下使用牛奶的情况下,分别降低一点一抗和二抗浓度会不会有条带。比如你可以做两次这样的:
1,5%牛奶,一抗1:3000,二抗1:4000
2,5%牛奶,一抗1:2000,二抗1:5000
对于特定的蛋白,用牛奶和用BSA常常会出现不同的结果。
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shenkunjie[使用道具]
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之前试过你说的第二种方法,不过当时压了30min白板就没继续延长时间。
今天3%BSA,2h,一抗1:2000,二抗1:5000,结果marker也曝出来了,非特异性条带比目的条带深很多,考虑是不是应该封闭过夜,并且提高一抗浓度才行?
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ladyhuahua[使用道具]
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我做的是磷酸化蛋白,脱脂奶封闭1小时。
我觉得你可以继续稀释下二抗的浓度,一抗就用1:2000。如果目的条带不是很浅可以不换一抗浓度。还有就是你做的是组织还是细胞,有时候蛋白提取不好时做的条带也不好,蛋白提取也很重要。如果都没问题,建议你换用一下二抗试试,找其他同学的好的二抗试用一下。
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shenkunjie[使用道具]
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结果还是不理想,郁闷ing~
3%BSA 4度过夜,一抗1:2000 4度过夜,TBST10*4,二抗1:5000,RT 30min,TBST10*5,结果还是有maker显色,奇怪的是一张膜上一些目的条带和非特异性条带同时出现,另一些基本什么都没有,不知道什么原因?
难道真的如楼上 战友说的蛋白提取有问题?
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小糖块[使用道具]
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以前我也做过磷酸化蛋白WB,封闭1小时,没问题的也没杂带.个人觉得上面说的蛋白制样和抗体的问题值得考虑.国内抗体就没国外的好
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H2O[使用道具]
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据说磷酸化的蛋白很容易脱磷酸化,所以样品一定要新鲜的,一般是一周以内的。不知是否准确?
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