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标题:【求助】请问跑完一向后胶条放哪里保存?(除水化盘外)

misswu61[使用道具]
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【求助】请问跑完一向后胶条放哪里保存?(除水化盘外)


请问跑完一向后胶条放哪里保存?因为我们要拿到自己的实验室-80度保存,不让带走水化盘,用什么保存呢?看园子里有人用密封袋,会不会污染或沾染胶面呢?另外再请问聚焦伏小时怎么算呀?上网搜也没找到计算方法。帮忙解释解释!!! 比如10000伏电压设为60000伏小时,是不是跑六小时啊?为什么不直接设时间呢?
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qumm1985[使用道具]
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回复 #1 misswu61 的帖子

我们的一向SDS-PAGE一般就用干净的保鲜膜包好放4度冰箱!
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misswu61[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 qumm1985 于 2013-12-23 17:42 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
我们的一向SDS-PAGE一般就用干净的保鲜膜包好放4度冰箱!

保鲜膜贴在胶面不要紧吗?
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qumm1985[使用道具]
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回复 #3 misswu61 的帖子

不要紧,我们这里一直都是这么放的,而且放那里几个月跑出来的二相都很漂亮。
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misswu61[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 qumm1985 于 2013-12-23 17:43 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
不要紧,我们这里一直都是这么放的,而且放那里几个月跑出来的二相都很漂亮。

非常感谢!不好意思,再请问一向聚焦总的伏小时怎么算?我们是按照伯乐教程做的。
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鸽子不哭[使用道具]
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请问跑完一向后胶条放哪里保存?因为我们要拿到自己的实验室-80度保存,不让带走水化盘,用什么保存呢?看园子里有人用密封袋,会不会污染或沾染胶面呢?另外再请问聚焦伏小时怎么算呀?上网搜也没找到计算方法。帮忙解释解释!!! 比如10000伏电压设为60000伏小时,是不是跑六小时啊?为什么不直接设时间呢?

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是在问IPG strips 怎么存吗?你做2D的实验室是把水化盘放-80存的吗?这个方法没听说,
我用的是GE的全套设备,有专门用来平衡一向胶条的塑料管子,24cm的Equilibration Tube 80-6467-79(GE公司),一向跑完后不马上跑二向就装进这个tube里-80存个几个星期都没问题。
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鸽子不哭[使用道具]
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我们的一向SDS-PAGE一般就用干净的保鲜膜包好放4度冰箱!

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楼主同学好像不是问二向SDS PAGE胶,都把我搞糊涂了。
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shenkunjie[使用道具]
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不能直接设定时间。因为聚焦过程一般不能达到你所设定的电压。比如你设定是10000 V,可实际可能只能达到8000V左右。像我跑7 cm的小胶,设定4000 V,一般只能跑到3000 V左右,而且在聚焦过程中电压是不断变化的,并不是维持在4000 V。所以要用伏特小时数来衡量聚焦效果。你只要根据自己胶条的长度,参考伯乐的讲义,设定所需的伏特小时就行了。(按你的条件,如果直接设定6小时,应该是达不到60000 伏特小时的)
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shenkunjie[使用道具]
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其实,我也想问问其他人是不是可以达到设定的电压。貌似电压升不上去是因为盐离子,但我的样品已经用clean up试剂盒处理过了。
我是新手,呵呵
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gemei0115[使用道具]
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电压升不上去有好几种原因,通过我自己的经验和资料搜索,我认为有以下几点可能:
1. 有些样本就算用了clear-up kit,除盐效果也不是100%,比如细胞样本如果在收获是用PBS这种含150mM NaCl的PBS洗,做western没关系,但在2-D上就有干扰,所以有些protocol中建议把NaCl换成250mM的sucrose。Kit的操作也很关键,比如起始量不要过多等等。
2. GE手册P70原文:Voltage limit not reached: The ionic strength of the rehydration solution is too high; reduce the IPG buffer concentration; use a mixed-bed ion-exchange resin to remove ionic breakdown products of urea or other additives. Desalt the sample or prepare the sample so that the salt concentration is less than 10 mM.
3. GE手册p71原文:Voltage too low or does not reach maximum set value: Prepare the sample to yield a salt concentration less than 10 mM. The recommended IPG Buffer concentration is 0.5%. A maximum of 2% is advisable only if sample solubility is a problem. High conductivity can also arise from the use of poor quality urea or other denaturants. Urea is also prone to decomposing to charged breakdown products. Higher conductivity salts and ionic impurities in the sample can raise the conductivity of the strip.
Shorter length IPG strips (e.g. 7 cm strips) will not reach 8000 V. The distance between the electrodes is shorter so that the voltage gradient (V/cm) required to reach the 50 μA current limit is reached at a lower overall voltage.
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