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标题:【求助】酶切 困惑

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【求助】酶切 困惑


我将pET28a-目的基因转化到DH5a中,长出单菌落后摇菌提质粒,酶切验证,第一次酶切后隐约有目的基因的条带(150bp),再次酶切后目的基因的条带竟然跑到300多bp处,很奇怪,大家帮我分析分析是什么原因?我是用EcoRI和SalI切的。很痛苦,我是不是没必要急着测序验证,应该重新连一次,转一次?先谢谢大家了!


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第二次酶切


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panda王[使用道具]
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你的目的基因比较小,双酶切后的目的条带在紫外灯下是不易看到的。建议你在EcoRI和SalI之间选择一个合适的酶切位点做单切,如果没切开,就证明你的目的基因已连入载体,并且同时做个PCR鉴定,进行验证!然后就可以测序了。望实验顺利!!!!!
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因为当时没有设计引物,所以就没有做PCR验证,只能酶切验证和测序验证,这样是麻烦了点。从第二张图上来看,是不是我的目的基因自连了然后又与质粒相连,所以才位置靠后呢?
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请问一下,我的目的片段104bp和140bp,双酶切1-5h都只有上边一条带,没有目的带,这是怎么回事啊
酶切体系:质粒6μ,酶各0.5μ,buffer1μ,水2μ,
还有我PCR鉴定时在目的带附近又出现了一条带,目的带上方和它距离很近,这是什么原因造成的?
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panda王[使用道具]
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你的PCR鉴定出了目的条带,应该就是连入载体了,上方的条带是非特异性扩增产物!酶切鉴定条带看不到是正常的!
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yes4[使用道具]
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你的图上看 应该没有切开,原因:1. 建议酶切时间12小时
2.建议换一个酶试一下
3.看一下NCBI上中国人的数据
4.你用的样本量太少,建议切24个以上,看是否有多态性
5.酶的用量不是太大问题,建议用0.3UL
6.建议设计引物时,片段控制在500bp以内
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=菓子=[使用道具]
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我的问题已解决:就是提的质粒浓度太小,目的基因的碱基数又比较小,故跑电泳看不出来,加大浓度后可以解决!
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