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标题:【求助】重组蛋白 western-blot后出现很多杂带

rxcc33[使用道具]
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【求助】重组蛋白 western-blot后出现很多杂带


重组表达的蛋白(未纯化),做western-blot后出现很多杂带,有点像考染的效果,不知道为什么?同样的抗体用来做纯化的蛋白(商品)则没有这个现象。求高手指点迷津
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131415[使用道具]
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你的抗体加的比例是不是一致的,两个蛋白是在一张上面做的吗,若不是,可能存在染色时间长了;如果你的重组蛋白未纯化的条带较目的带小,可能会是降解。
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rxcc33[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 131415 于 2014-1-9 10:51 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
你的抗体加的比例是不是一致的,两个蛋白是在一张上面做的吗,若不是,可能存在染色时间长了;如果你的重组蛋白未纯化的条带较目的带小,可能会是降解。 ...

抗体比例是一样的;对照是放在一起做的;不是很明白你说的染色时间长了是指抗体孵育时间还是显色时间?如果是显色的话应该不会,都很快终止的;至于抗体孵育时间,我都是一抗四度过夜,二抗37度一个小时。蛋白降解也许会有,但应该不会那么严重,看起来就像考染那样,所有带都出来的样子。
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谢谢131415的分析,或许我可以考虑下孵育的时间~  希望大家再给我提提建议~
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tuuu2[使用道具]
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个人感觉可能有以下原因:
1.抗体大半用兔来制备,兔可能感染过大肠杆菌,此大肠杆菌与表达宿主菌有许多共同抗原。
2.WB是很敏感的,比考染敏感超过一个数量级,蛋白在迁移过程中可能会有一部分表达的目的蛋白迁移到其它区域,虽然很少,但因为WB的敏感还是会显色的。
3.显色方法的原因,转印膜上的结合有不同质的蛋白,所以染料会有不同的结合色差,特别是膜要干没干的时候最明显,
解决办法:
1.高免血清最WB前,用未诱导的宿主菌吸附一下
2.减少一抗或二抗的浓度。
3.选择合适的显色方法,
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rxcc33[使用道具]
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谢谢上面几位战友的指点! 我的一抗和二抗都是2000倍稀释,貌似已经比较低了,不知再稀释还可以不可以?xuezhishui 的建议会采纳 谢谢:) 
说到的解决办法1 我不是很懂~ 呵呵 希望有更直白的讲解
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rxcc33[使用道具]
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对了,补充一点,我的封闭液是2%BSA,是不是改用脱脂奶粉更好?因实验室没买脱脂奶粉,而其他人用2%BSA做并无问题,所以也就这么用。
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6327555[使用道具]
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我可以明确的告诉你,如果样本是从e.coli分离得来的,没有经过纯化,用WB是不适合的。
原因如下:我们用的抗体一般都是从原核表达的蛋白作为抗原,免疫动物后得到抗体。需要牢记在心的是,作为抗原注射到身体里的除了重组蛋白,还有少量细菌的蛋白,这些细菌蛋白引起的免疫反应比重组蛋白引起的免疫反应要高。所以如果有少量的细菌蛋白存在的话,你的重组蛋白在WB中很弱了。如果一定要用WB的办法看,纯化是必需的,即使做了纯化,你的条带和非特异的条带比,也是很弱的。
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rxcc33[使用道具]
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谢谢大家,基本上问题就是楼上两位战友提到的原因吧,我打算纯化后再做就知道是不是了。不过其实目的带还是很强的,比其它条带强。
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