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标题:【求助】植物叶片全蛋白2D电泳求教

toy[使用道具]
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【求助】植物叶片全蛋白2D电泳求教

我做2D已经有段日子了,可是感觉还是有很多问题,恳请各位高手指点交流。
我的材料是植物叶片,用的是TCA-丙酮沉淀提取,然后用裂解液溶解后离心上样。这里边的离心一般应该采用多少G?我使用的是15000rpm可以吗?之后我用的是pH 4-7 ,13cm 胶条。
IEF程序: 30 V 12Hr, 100 V 1Hr,200 V 1Hr, 500 V 1Hr, 1000 V 1Hr ,8000V grad 1Hr,8000V 聚焦64000Vhr。之前做的总有明显的横向拖尾,因此我增加了聚焦。
接下来,胶条平衡,SDS-PAGE ,采用银染。
附图如下:


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toy[使用道具]
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上端是前沿,左边为正极。
顶部的那条横纹很明显,做了几次总是有,不知道怎么样才能解决。
底部大分子区域,横向拖尾也很严重,我增加聚焦后 ,有一定的改善,但是还是不理想。
我之前用pH 3-10 的做过,感觉高pH 端蛋白点很少,所以才更换用4-7 。然而,做下来感觉点很少,貌似没有完全分开,是要进一步增加聚焦么? 稍后我发以前的pH 3-10的图。
大家帮我看看,指点下阿! 先谢过了~
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之前pH 3-10 的图,也做的不好,大家多指教指教...


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我以前也做过植物各个部位的蛋白提取,感觉叶片里的蛋白还是很多的,但是植物细胞里面的色素比较多,所以提取出的蛋白样品一般颜色较深。我推荐一个protocol,祝你成功
1、液氮研磨样本,充分破碎组织。叶片是很好磨的部分,一定要研成粉。
2、预冷的 TCA/丙酮/65mM DTT 沉淀,-20度,一小时,离心,去上清,风干。预冷丙酮沉淀,-20度,1小时。离心,去上清,风干。
3、裂解。1.5ml EP管中放入100-200ul样品,加入1ml裂解液,超声破碎
4、离心,收上清。这里样品中有很多颗粒,所以转速一定要高
5、0.22um滤膜过滤,如果你上一步做的好,这一步是很轻松就能过的
6、超滤浓缩样品(建议用超滤管超滤),备用
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shenkunjie[使用道具]
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5
 
上了多大量啊!感觉点不是很多,如果浓度还可以的话,稍微纯化一哈,尝试一哈!纯化后加大上样量,用4-7的胶条跑一个看看!
选个 试剂盒纯化就挺好用的!
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6
 
叶片的蛋白提取,色素确实很多,我得到的蛋白沉淀也都带有淡淡的颜色,有裂解液裂解后,15mg/300ul 裂解液。我的提取蛋白程序和你的差不多,我TCA-丙酮溶液加入的是巯基乙醇。之后用丙酮洗涤沉淀2次,15000rpm 离心后,风干。
裂解的时候我没有用超声,因为我实验室没有适合的超声仪。我就是混匀后放置在4 度3Hr。
我每步离心都是15000rpm,是要再提高吗?
我也看到很多的地方说要超滤浓缩,但是我不晓得具体怎么操作..(比较菜),能给我具体说说吗?
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7
 
我4-7的那个胶上样量250ug。
现在我也觉得样品的制备可能存在很多问题..
像很多帖子里说的要除盐,除脂除核酸的..我就像上面说的,没有再进一步纯化过。
请教下,都有哪些好的纯化的方法么...买试剂盒..clean up kit 考虑过,但是太贵了,买不起啊...
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toy[使用道具]
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我正计划着重新制备一次蛋白样品:
叶片液氮研磨后加入预冷的10%TCA、0.07%巯基乙醇的丙酮溶液中,4度放置1Hr,20000g离心30min,沉淀用含0.07%巯基乙醇的丙酮重悬,4度过夜。20000g离心30min后,用90%丙酮洗涤沉淀2次,风干。再用裂解液溶解,放置3Hr,20000g离心30min,取上清液上样。
大家分析一下 ,这样行不?还需要什么别的处理过程? 我看到很多帖子说超滤浓缩,我做的是植物叶全蛋白,超滤管应该如何选取呢?裂解时 ,蛋白确实很难溶解,有什么好的方法没? 请多多指教~谢了
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叶片液氮研磨后加入预冷的10%TCA、0.07%巯基乙醇的丙酮溶液中,4度放置1Hr,
这一步过夜是不是更好一些呢???
tca--丙酮是起沉淀作用的,丙酮只是洗的吧???
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toy[使用道具]
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我又重新提了一次蛋白,并且继续增加了聚焦时间做了一次。不知道什么原因,第一项IEF电压没有上升到8000V,第二项跑完染色后,图特别的糟糕,在高分子量区域黑成一片。难道是我蛋白提取又出现问题了?离子浓度太大?真是郁闷至极...图就不发了..
休整一下,明天继续...
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