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标题:【求助】WB,我该怎么办

wiwi[使用道具]
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【求助】WB,我该怎么办

我用的是恒压,湿转,bio-rad,100V2H,老是效果不好,我的蛋白58KD,我发现恒压的过程中,电流基本上都在1A以上,缓冲液都沸腾了,因为我是在跟国外的博士后后面作实验,我想换条件,但是他老不换,所以转膜一直在折腾,效果一直不好,快一个月了烦死了,天天在弄这个.以前在学校用的半干转,恒流,效果很好,到这里只有伯乐的湿转仪.晕啊,我认为还是恒流好,不知道为什么恒压100v,电流怎么那么高,buffer boiling
用丽春红S染色,基本上看不到什么条带,我的蛋白浓度是按梯度来上样的,预染MARKER有的时候转的时候,但最后ECL显色看不到目的条带,昨天做了(经过细微改进)一次,在膜上看到预染MARKER最大分子量的带和最小分子量的带转的很清晰,但中间的就看见一条带,还斜的很,最后ECL,能看见前四个蛋白浓度梯度的目的条带(1:2 1:4 1:16 1:64)但是我在溴酚蓝终点指示位置下面,这四个浓度梯度下面膜上大量的蛋白聚集在一起,非常乱,不知道什么原因!请大家给我分析分析。谢谢!
另外补充一下,我的蛋白浓度很高的,是经过纯化的蛋白,经过bradford检测,我的蛋白经过1:4096稀释,OD值都>3
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kuaizige[使用道具]
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那个国外回来的家伙估计用的是能循环制冷的湿转系统,能长时间保持在4度低温,所以效果会很好。
你转的时候没有在转膜槽周围敷上冰块降温,2h还真的会沸腾。不过1A的电流实在是大了点,是不是电转液该换了?(只能用3-5次)
建议在转膜前将电转液置于4度冰箱预冷,然后在转移时敷上冰块。
开始电流200mA多点,结束时不到400mA为正常。
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wiwi[使用道具]
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冰块降温肯定是要用得,因为放在冰箱里对冰箱会有影响,所以都在实验台上进行得,我们还参照Bio-rad得方法,在转移槽里面放了个转子,也就是所谓得让buffer 循环,buffer prepared fresh everytime,电流实在是太高了,一小时后就沸腾了,烫死了,这个做法做得商榷,大家帮我分析分析。
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kuaizige[使用道具]
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开始时电流是多大?
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wiwi[使用道具]
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回复 #4 kuaizige 的帖子

开始时候电流就很大 达到1A以上
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zhenxin[使用道具]
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有2种选择,(1)恒流,200-250mA,100min;(2)恒压,80-100v, 60-10 min,效果都还可以。转膜缓冲液最好用新配制的,因为甲醛的原因,同时溶液需要放在4度预冷后使用,能有效降温,加最好加上预染MARKER,可以监测转膜的情,整个电泳槽也要注意降温,否则膜真的烧啦,有事情可以再问:)
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kuaizige[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 wiwi 于 2014-1-9 16:46 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
开始时候电流就很大 达到1A以上

要么是电转缓冲液有问题,要么是电压不是100v。
刚开始就1A绝对不正常!!!!
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kuaizige[使用道具]
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把你转移时电泳仪的照片发过来,我看下电流和电压都是多大
把你的转移液配方贴上来
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wiwi[使用道具]
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今天正在做的
我做了监测
100V 0h 0.64A
100V 1h 1.96A
1h later >2A
我的buffer配方:
Tris Base(Trizma)25mM 3.94g
Glycine 192mM 14.41g
Methanol 15% 150ml
SDS 0.01% 100mg
MiliQ H2O 1L ph8.3
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windy+++[使用道具]
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我们130KD的蛋白在恒流300mA的情况下只要2h,恒压60V4h,你的需要那么多的时间吗?
我们有人转60kd左右的在恒压70v的情况下两小时就有点过了,1个半小时差不多
另外我们一直都是直接放在冰箱里面转的,四周还加冰
"但是我在溴酚蓝终点指示位置下面,这四个浓度梯度下面膜上大量的蛋白聚集在一起,非常乱,不知道什么原因!"是不是电泳不好啊~你的tris-hcl有没有检测一下PH值呢?
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