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标题:【讨论帖】用Protein柱纯化小鼠腹水单抗出现沉淀

zhezhe[使用道具]
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【讨论帖】用Protein柱纯化小鼠腹水单抗出现沉淀


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自己制备了小鼠单抗(IgG2b),现在制备了大量的腹水,准备纯化。用GE公司的Protein G纯化在中和那步时,只要加中和的buffer,纯化后的抗体溶液就有浑浊的沉淀, Protein A也试过了,结果类似。先按公司给的protocol做,失败了,然后试了不同pH的洗脱液,也没找到合适的方法。大家有何建议?
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fei1226com[使用道具]
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抗体纯化时就是这样,洗脱时常常会有一些浑浊。0.22um膜过滤去除就可以了。另外,减少浑浊的可能方法:一是中和buffer的pH由9改为8,预先加到收集瓶中;二是在收集瓶中加一些甘油,如果对你的后续用途没有影响的话。
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楼上说的对,另外你纯化前腹水中的脂肪颗粒是否已经除去?这步操作也很重要。
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谢谢楼上的2位战友。中和buffer的pH值这俩个范围都试了,都不行。在纯化前用binding buffer稀释10倍腹水后,用0.22um过滤后过的柱子。其他的5种抗体没问题,只有这个抗体会出现沉淀的现象。
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tangxin_80[使用道具]
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上周末去听了个培训班,根据讲师的说法proteinA、G系列对蛋白有损伤作用,而且这种作用是不可逆的,纯化出的蛋白也不适合长期存放。
他推荐用IMAC层析,可以在0.3~0.5M NaCl、pH8.0-8.1条件下上样,有利于蛋白稳定和减少非特异性吸附。然后用pH4.0的100mM的CH3COONa(含0.3~0.5M NaCl)pH梯度洗脱。如果纯度不够,可以再接一步疏水层析。
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上周末去听了个培训班,根据讲师的说法proteinA、G系列对蛋白有损伤作用,而且这种作用是不可逆的,纯化出的蛋白也不适合长期存放。
他推荐用IMAC层析,可以在0.3~0.5M NaCl、pH8.0-8.1条件下上样,有利于蛋白稳定和减少非特异性吸附。然后用pH4.0的100mM的CH3COONa(含0.3~0.5M NaCl)pH梯度洗脱。如果纯度不够,可以再接一步疏水层析。

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关于用金属鳌合柱纯化IgG说的不是一天两天了,大约在5、6年前GE的一个会上,有位嘉宾就讲过此方面的内容。我听了觉得有些好奇,就装了个柱试试看。试验了不同的吸附和洗脱条件,最后结果是:
1、IMAC柱确实可以吸附样品中的部分IgG,但不能吸附全部,就是说有较多的穿透损失。
2、洗脱条件很窄,低浓度的咪唑皆可洗出,选择性不强。
3、想要通过改变吸附和洗脱条件来提高纯化的抗体纯度余地很小。
所以,我的结论是IMAC纯化抗体是鸡肋。如果没有A/G柱用,可以勉强一试,否则没有什么大意义。至于A/G柱纯化的抗体为什么不适合长期存放,我对此难以理解。全球的大抗体公司纯化几乎用的都是A/G柱,而且A/G柱的价格比IMAC、HIC要高很多,应该有它的理由。
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zhezhe[使用道具]
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是啊,目前来说,纯化高纯度度的抗体,最好用A/G柱。我这个纯化不管柱子对抗体的损伤有多大,都无所谓,但洗脱下来的目的抗体只要一中和,马上出现沉淀。并且,在腹水里加醋酸钠(pH4.8),也出现沉淀。是不是该抗体的等电点的本性决定的啊?
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tangxin_80[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 ero11 于 2014-1-15 15:14 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')
上周末去听了个培训班,根据讲师的说法proteinA、G系列对蛋白有损伤作用,而且这种作用是不可逆的,纯化出的蛋白也不适合长期存放。
他推荐用IMAC层析,可以在0.3~0.5M NaCl、pH8.0-8.1条件下上样,有利于蛋白稳定和减少非特异 ...

第一,我漏说了金属螯合层析填料要选用那些臂比较长的
第二,建议的洗脱方式是pH梯度,不是咪唑
第三,我们公司目前做的一个蛋白用proteinA纯化的,长时间放置后活性损失较大,但也不是说所有的都这样,只是作为一个提示
第四,我没有否认A/G的优点特异性好,快捷,方便,但是其缺点包括有失活可能,价格高,不适合所有抗体,时间长,载量小,而且目前耐碱的proteinA似乎只有一种,如何保证除热源?配基脱落也是一个问题。
第五,价格高,有其生产成本的因素,而且处于近乎垄断地位的商品有什么具体的定价标准,GE的东西都贵,买的人不还是多?
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zhezhe[使用道具]
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如果是公司大规模的生产,可以摸索不同的条件去优化纯化方法,但在搞科研的过程中,没有大量的时间来投入纯化这一步。
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ero11[使用道具]
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第一,我漏说了金属螯合层析填料要选用那些臂比较长的
请教有商品化的介质吗,还是要自己做胶?能否给个名称,我也买点来试试。
第二,建议的洗脱方式是pH梯度,不是咪唑
是pH梯度还是分段pH?我感觉除了HPLC这样的精确系统外,梯度洗脱方式不适合实验室操作。原因有二:一是纯化设备,并不是很多实验室都有AKTA之类的好设备(虽然我有几台);二是自装柱达不到很高的均匀性,特别是用国产的空柱。所以做实验时拉梯度所得到的结果往往不能重复和放大。
第三,我们公司目前做的一个蛋白用proteinA纯化的,长时间放置后活性损失较大,但也不是说所有的都这样,只是作为一个提示
这个我不认为是纯化的原因。应该是保存条件和缓冲体系的选择因素。
第四,我没有否认A/G的优点特异性好,快捷,方便,但是其缺点包括有失活可能,价格高,不适合所有抗体,时间长,载量小,而且目前耐碱的proteinA似乎只有一种,如何保证除热源?配基脱落也是一个问题。
是啊,A/G太贵,sure介质简直就是天价。还好我纯化的蛋白对热源没有要求,但IMAC可以用NaOH清洗吗?或者说能用NaOH清洗的IMAC介质价格也不便宜吧,那些预挂Ni的IMAC介质能用多少次而载量下降不大?自己挂Ni?好想法,翻遍user manua,好,还真的有,那就做吧,咦,怎么和新介质性质不一样了?NaOH不耐了,DTT也不耐了,哇哦,原来再生方法是商业秘密。
不适合所有抗体,yes,IgM它就无能为力。
载量小,我不大同意。A/G在实际纯化过程中的载量大约在15mg/ml左右,IMAC和蛋白种类关系很大,但绝大多数在20mg/ml左右,相差不是太大。再考虑到吸附动力学的因素,A/G对抗体的吸附牢固都高于IMAC吧,所以我认为IMAC并不能提供高于A/G多少的载量。
第五,价格高,有其生产成本的因素,而且处于近乎垄断地位的商品有什么具体的定价标准,GE的东西都贵,买的人不还是多?
国产胶也有好东东,垄断正在逐步打破,价格比GE要便宜很多。做纯化的人非常高兴看到有和GE产品品质媲美的国产介质出现。
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