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标题:【求助】关于包涵体溶解

49888[使用道具]
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【求助】关于包涵体溶解

请教各位大侠,我诱导了200ml菌液,加入多种酶、破菌后,低浓度尿素洗涤,用8M尿素溶解包涵体,完全悬浮沉淀后,液体呈淡红褐色,4度过夜,离心后仍有很多沉淀。这沉淀吹打时有些粘稠,红褐色。电泳结果显示,沉淀中仍有目的蛋白。这种现象一直存在,总有部分沉淀不溶,而且有颜色。
1、我总觉得超声破菌那步有问题,是破菌不充分还是过了?有人用结晶紫染色后镜检。如果不染色的话,在镜下能够分辨吗?
2、低浓度尿素梯度洗涤包涵体的目的是什么?是洗杂蛋白,促进包涵体溶解吗?我曾用1M、3M、5M充分洗涤包涵体,沉淀的颜色逐渐加深,结果8M溶解时,混合液体颜色是深红褐色,离心后还有不少沉淀。这是怎么回事?难道尿素反复洗,和蛋白起什么反应了?
3、总有不溶解的包涵体,怎么办?换盐酸胍?有资料说,盐酸胍溶解的包涵体在蛋白复性过程中问题比较多,是吗?
3、离心后的上清有颜色,这种状态能上柱子吗?
这些问题怎么解决好呢?这个实验总是在这步出很多状况。谢谢大家!!请帮我解决一下!急切等待~
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阿k[使用道具]
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1.你指的超声有问题是值影响什么,不管破壁充不充分,包涵体是肯定的,过点也不可能把包涵体超会溶解状态,过点没事,有可能有一部分可溶性的留在超声上清里
2.洗涤当然是让包涵体部分更纯一些,就像你说的洗杂蛋白,还能出掉一部分膜蛋白,这个过程一定要有的,之后8M溶解的目的蛋白在柱上复性或纯化时会更容易一些,颜色好像没大问题,没遇到过,不过有的包涵体就是红褐色的,离心后的沉淀就不要留了,可能含有大部分是酯类和细胞碎片啥的,所以很粘
3.不溶的不要也行,应该不是很多吧,回收蛋白纯化蛋白回收率不可能是100%,肯定会有损失的,盐酸胍基本上蛋白全部变性,复性的概率比较低
4.这个颜色问题好象没有影响吧,只要样品离心了,过滤了,不堵柱子,不是沉淀,上柱没问题
唉 能不处理包涵体还是尽量让它们可溶性表达吧,还载体还表达菌,摸索诱导条件,包涵体不好复性啊
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daod[使用道具]
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你提取的蛋白是要保持活性的吗?如果不需要保持活性,只需要把你的菌体沉淀溶解在含有8M尿素的缓冲液中溶解两小时,离心,你所要的蛋白就在上清中了,我们实验室用它做了N个蛋白,没有问题的。参考Qiagen蛋白回收的使用说明。
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redbutterfly[使用道具]
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1、我总觉得超声破菌那步有问题
要判断超声破菌有没有彻底破碎,可以超声后革兰氏染色镜检(可以用没破碎的菌做对照)。经验是菌体破碎充分后,不粘稠,比较清亮。
2、低浓度尿素梯度洗涤包涵体的目的是什么?是洗杂蛋白
主要目的是洗掉杂蛋白。可在低浓度尿素洗前先用Tris缓冲液洗,这样可将包涵体洗的更干净。
3、不知楼主用了多少ml尿素溶解包涵体,可以多用点。如果包涵体溶解后很粘稠,那多半是超声破菌有问题,菌体DNA打断不充分。
4、溶解包涵体后4度过夜,让其充分溶解。
5、如果还是有不溶的包涵体,不要它了,离心,过滤,上样。
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guagua[使用道具]
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哎呀,恍然大悟,如果粘稠的话是DNA的影响,那就是破壁不充分,如果是胶状冻块状的东西 ,那就是细胞碎片了,恩应该是这样了
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wmp1234[使用道具]
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2.洗涤当然是让包涵体部分更纯一些,就像你说的洗杂蛋白,还能出掉一部分膜蛋白,这个过程一定要有的,之后8M溶解的目的蛋白在柱上复性或纯化时会更容易一些,颜色好像没大问题,没遇到过,不过有的包涵体就是红褐色的,离心后的沉淀就不要留了,可能含有大部分是酯类和细胞碎片啥的,所以很粘。
用低浓度尿素反复洗后,包涵体沉淀颜色逐渐加深,真是很奇怪,不知道哪里错了。
4.这个颜色问题好象没有影响吧,只要样品离心了,过滤了,不堵柱子,不是沉淀,上柱没问题
我上次将这种状态的上清过柱子了,结果柱子颜色变褐色了,倒是没堵。但是柱子的结合力下降了,难道是导致脱镍了?这次我也不敢上柱子了。
太感谢了!!
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49888[使用道具]
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1、我总觉得超声破菌那步有问题
要判断超声破菌有没有彻底破碎,可以超声后革兰氏染色镜检(可以用没破碎的菌做对照)。经验是菌体破碎充分后,不粘稠,比较清亮。
这个方法好啊。我做的破菌后液体颜色像豆浆,不粘稠,这样正常吗?
非常感谢!!
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哎呀,恍然大悟,如果粘稠的话是DNA的影响,那就是破壁不充分,如果是胶状冻块状的东西 ,那就是细胞碎片了,恩应该是这样了

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你指的是什么?用8M尿素溶解的包涵体离心后沉淀吗?
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cwcwcww[使用道具]
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是有点像豆浆,正常的,400W,4-5 min超声应该可以充分破碎了
当让你也可以采用如下策略让菌体裂解更充分
加入溶菌酶后37度作用30 min(溶菌酶最适温度是37度)
冻融两次。
如果还嫌麻烦加入溶菌酶后直接4度过夜
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49888[使用道具]
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呵呵,你在啊,太好了!
我按照《分子克隆》加了各种酶和脱氧胆酸,加完后菌液很粘稠,又加的DNas ,溶液不粘了。然后破菌。400w,工作10s,休息10s,120组。是不是已经够充分了?除非那个超声破碎仪指针有问题。
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