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标题:【求助】总是转膜转不上去

pengke1983[使用道具]
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【求助】总是转膜转不上去


我用0441的marker,湿转,2个小时,电压100伏,正负极没有放反,没有短路,电转液也试着更换新配的,但是就是转不上去。愁死了!!!!2个小时后,marker还在胶上,就跟没转似的,我要疯了!!!!!求有经验的指导啊!!!!
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#甜#[使用道具]
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胶和膜的位置放反了吧。
多问一句:你的电泳液如何配的,进行预处理了吗?
转膜时实时电流一般是多少?
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taoshengyijiu[使用道具]
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这样的情况不多,一般不会一点也转不过去的。
【1】转移的时候有放冰袋或者冰降温吗?如果没有,转移完后,转移液应该是有比较明显的温度升高,即使放了冰袋或者冰,转完后电转液的温度也会有一定的升高(可以用手摸一下转移液,很容易摸出是否有温度的升高),如果转完后没有温度升高(和初始的转移液温度相同),说明根本就没有有效的转移。可能是转移槽的盖子没盖紧,电源没接上,转移槽支架上的金属丝断了,或者某个地方的电线接触不好。请注意这一点,感觉转移完成后,转移液的温度并没有升高的可能性比较大,如果这样,转不过去的原因就如上述。感觉问题在此点的可能性比较大。
【2】电转液(转移液)是怎么配制的?我用的是如下配方,尽管配方并不都是相同的,但应该还是差不多的,看一下,是不是电转液有问题。
转移缓冲液(48mmol/L Tris,39mmol/L甘氨酸,0.037% SDS,20%甲醇)
甘氨酸(MW75.07) 2.9g
Tris(MW121.14) 5.8g
SDS 0.37g
甲醇 200ml
蒸馏水至 1000ml
溶解后室温保存,次溶液可重复使用3~5次。
上面是1×的,配制时可以配成10×的,然后应用时再稀释成1×的。
【3】转膜一般还是用衡流好一些,所以最好不要用衡压,而用衡流。
【4】即使胶和膜的位置放反了,或者夹膜的夹子黑面和白面放反了,胶上的蛋白也会转走的,转不到膜上,也会转到其他地方的,而不会在胶上的。
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pengke1983[使用道具]
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4
 
谢谢楼上的,我感觉是第一种情况,“可能是转移槽的盖子没盖紧,电源没接上,转移槽支架上的金属丝断了,或者某个地方的电线接触不好。”
今天上午我准备再试试,如果还是不行,我就联系厂家!
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IAM007[使用道具]
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做电转不是看电压,是看电流,如过样品是DNA的话电流要更高点,一般的DNA电转电流强度都在400mA左右,蛋白样品可能小点;确定你的胶与膜的顺序有无放反,电转液的PH很重要,一定要按要求配制,一般看电源上显示有电流的话说明你的仪器没有问题,电转的时间自己把握。
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pengke1983[使用道具]
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还是转不上去。愁死我了。我的PVDF大小是3*4,然后恒流是30mA, 转了2个小时,转过和没转上的迹象都没有,marker 上的条带还在胶上!!!!!我用的是六一厂子的40D型,然后是湿转,黑面是负极,白面是正极,胶在黑,膜在白,槽也是黑黑对应,白红对应!!!我都要疯了!!!
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pengke1983[使用道具]
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忘记说明了,我的目的蛋白分子量大小是50kd 和43kd
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glass[使用道具]
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至少你的"电能"用的是不对的!
总"电能"应大约1个安时(就是电流X时间的总和)。
30mA是太低了。可以加10倍或更多。但要注意降温,会产热的。
另外,别忘了加甲醇呀。尤其是在10X的浓缩液稀释时。
good luck!
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daod[使用道具]
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30mA的电流太低了,200mA还要转2个小时呢,把电流加大
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pengke1983[使用道具]
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10
 

加大电流到350ma,转了70分钟,全转过了。
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