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标题:【求助】求Westernblot高手帮我分析这个条带

deducte[使用道具]
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【求助】求Westernblot高手帮我分析这个条带


左边一组的条带和右边一组的条带是上样同样的sample到同一张gel上,转到同一张membrane(用了15 well)的。而且一抗和二抗也都在同一个box里进行(中间粘胶带,但可通),发光后也在一张胶片上拍到的。上面的是NF-kB, 下面是actin,sample是nuclear的蛋白,但是把NF-kB除以actin后画出来的图却全然不同,,,,使我困惑,他们应该是一样的呀
或许有人说我上样时pipetting有问题,上的不均,但是我使用pipet有信心,不会出错。做western也不是一两天了,怎么会出现这种情况?!!!
而且这已经是第二次了。。。。
求各位高手和过路人不吝赐教!!先谢了!!


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tangxin_80[使用道具]
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1.最大可能是你上样的问题,虽然你很自信。WB灵敏度高,同时也表明上样的毫微差异也将如同显微镜一样将其放大表现出来。
2.按我的理解你的膜是被你剪开了,在同一box孵育的。如果是这样,应该和整张膜孵育也有差异了。
3.底物的均一性问题。
4.显影操作,有时候我把底片加入显影液后底片会浮在显影液之上, 这可能也有影响吧。就是指显影时间长短的问题。定影时间也会有影。
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感觉最大的可能在上样上。
【1】蛋白煮沸5分钟后,最好用震荡混匀器混匀含上样缓冲液的蛋白。如果不混合,可能造成蛋白浓度不均。
【2】煮沸后,会有一些液体到小的离心管的管壁上,为了让离心管管壁上的液体流下来,有些人采用了离心的方法,注意离心的转速不要过大,否则也可能造成蛋白浓度不均匀的现象。
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yjf1026[使用道具]
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另外,看上去你的NF-kB在一些样品中太多了,WB条带已经过饱和了定量就不可靠了。
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deducte[使用道具]
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谢谢各位的建议!!
不过我上了10ug蛋白,已经是我用过的量中最少的了,我怕再少了actin出不来。怎么办?
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huifeng0516[使用道具]
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WB曝光对结果的影响很大的,可以将actin和NF-kB分开曝光.
我觉得你的actin曝光时间和抗体稀释度是合适的,你的上样量,10ug确实已经很少了,不要再减少了。
对NF-kB,你可以将抗体稀释度减半,这样就不会出现过度曝光的问题。不过由于背景还好,你的抗体稀释度也是可以的,也可以考虑将曝光时间减半。这样做出来的结果会更可信。
此外,前面提到的上样可能也存在问题。我的一个做法是,在上样管里面加入上样缓冲液的时候,先用枪头搅一下,上样前要煮一下,然后,一定要离心,即使是这样,还是有可能出现没有混匀的现象。每一管取的时候,枪头都应该贴近液面。
呵呵。
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huifeng0516[使用道具]
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请问楼上,您的结果怎么做得那么好?我的结果怎么总是非特异条带那么多,能指点一下吗?我蛋白上的是40ug每道,caspase-3抗体1:1000,4度孵育过夜。楼上战友说的,WB条带已经过饱和了定量就不可靠了,这里“WB条带已经过饱和”指得是什


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楼主目的蛋白过爆了,就算2个条带上样量完全一样,一个条带跑得宽大一点,一个条带跑得细窄,过爆之后就会出现很大的误差,存在一个最佳曝光时间可以让它们的灰度刚好为1:1,具体是多少谁知道呢。
可以这样做吗?
把同一样品分别上20ug,40ug,通过调整曝光时间使其灰度刚好为1:2,此曝光时间设为最佳曝光时间。
actin也可以同样找到一个最佳曝光时间。
很有才哇
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huifeng0516[使用道具]
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“把同一样品分别上20ug,40ug,通过调整曝光时间使其灰度刚好为1:2,此曝光时间设为最佳曝光时间。
actin也可以同样找到一个最佳曝光时间。”
确实很有才的一个想法,不过我想您真的好好做几次就会发现这样是行不通的。
呵呵!
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ero11[使用道具]
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请问下楼主下面那个柱形图是用什么作出来的?
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