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标题:【求助】WB膜的重复使用及显色

yonger[使用道具]
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【求助】WB膜的重复使用及显色


最近要做western blotting磷酸化蛋白和未磷酸化蛋白,因为样本珍贵,想要跟大家交流一下同一张膜如何重复使用的问题。我也看了一些战友的帖子,多使用膜剥脱液,配方如下:
62.5mM Tris-Hcl,PH6.7
2%SDS
7ml巯基乙醇
总体积100ml.
各位使用过的战友感觉如何,原来的条带是否剥脱的干净?另外,大家是否有其它好的膜剥脱液的配方或是检测磷酸化蛋白、未磷酸化蛋白的经验,请战友不吝赐教!
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49888[使用道具]
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62.5mM Tris-Hcl,PH6.7
2%SDS
7ml巯基乙醇-----应该改成700ul
总体积100ml.
效果不错的。
放在65℃的水浴中45min,我用的是泡沫盒,这样45min后水温度还在50℃以上。
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dog002[使用道具]
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在Western Blotting试验中,完成第一轮杂交后,经常需要重复使用同一张膜,进行第二次/第三次杂交,最为常见的情况包括:
(1)内参杂交。内参是在不同的组织细胞中普遍等量表达的蛋白,通过杂交内参,从而确实目的蛋白表达的增加或减少。
(2)信号传递研究中,检测其他目的蛋白。
(3)检测目的蛋白磷酸化(phosphorylation)或甲基化(methalation)后,继续检测总目的蛋白的表达。
利用同一张膜进行多次蛋白检测,不仅节省蛋白样品、省略蛋白电泳和膜转移等耗费性步骤,而且可消除重新上样带来的误差,使可比性更强。
进行新一轮杂交前,需首先去除第一轮杂交时结合在膜上的一抗和二抗。传统的方法是使用具有强烈刺激性臭味的b-巯基乙醇, 55℃水浴振荡30分钟。
我用的是Wlaterson Western Stripping Solution ,不含b-巯基乙醇,只需室温条件下20~30分钟,即可去除前一轮杂交时结合在膜上的一抗和二抗。同时不破坏膜上的蛋白抗原,不导致蛋白信号的减弱,可重复使用2~4次,且背景也很干净。
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yonger[使用道具]
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感谢楼上战友的指点.另外,当目的蛋白与内参蛋白分子量相差较大,条带相距较远时,可否先分别加入一抗孵育,清洗后再加入二抗(如果二抗为同一种的话)后再显色呢,两者是否会产生干扰?是否有战友尝试过?
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dog002[使用道具]
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目的蛋白与内参蛋白分子量相差较大,条带相距较远,你可以通过预染蛋白maker判断蛋白位置,剪2块小膜同时转膜,分别孵育
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ero11[使用道具]
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当目的蛋白与内参蛋白分子量相差较大,条带相距较远时,可否先分别加入一抗孵育,清洗后再加入二抗(如果二抗为同一种的话)后再显色呢,两者是否会产生干扰?是否有战友尝试过?

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不建议如此做。一是因为担心目的蛋白可能有较深的backgroud或者non-specific binding band,会影响内参。二是内参蛋白一般情况下量较大,往往压片时只需要压几秒,而目的蛋白可能压片所需时间较长。三是将目的蛋白与内参的抗体放一起不可取。如先孵育一个抗体后,再孵育另一个抗体也会大大延长时间.
所以,同意楼上建议,可将membrane剪开后分别压不同的抗体。但是要先转膜,再将其剪开,然后不同的membrane孵育不同的抗体。
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比如两个蛋白大小分别是80kD和90kD离得比较近,怕剪坏,你可以压完第一个抗体的片子,TBST洗一下,直接再封第二个抗体的一抗和二抗,再显影完全不受影响,最后扫完在photoshop上处理一下,完全分得开,如果一个是25kD一个是43kD,就可以第一次的时候从中间剪开,我不明白为什么要褪膜,首先怎么样能保证在整张膜的任何地方的褪膜的作用都是一样的,其次如果两个抗体都是43kD的蛋白,褪了一次再孵育一次,不能保证第一次就肯定影响不到第二次的结果,这种情况选一个别的内参做比较好。
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redbutterfly[使用道具]
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能告诉你的Wlaterson Western Stripping Solution 的配方吗?
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yonger[使用道具]
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回复 #8 redbutterfly 的帖子

我是买的试剂啊~~~~~~~~~~~~~
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finger[使用道具]
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如果所测的蛋白分子量差距比较大的话,是不需要褪膜的,前一个蛋白显色后再直接孵育下一个蛋白好了。
褪膜的话,不管再怎么小心,抗原也会损失的
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