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标题:【求助】毕赤酵母表达的目的蛋白的纯化问题

plaa[使用道具]
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【求助】毕赤酵母表达的目的蛋白的纯化问题


最近我在做毕赤酵母表达蛋白的纯化,目的蛋白等电点在9.6左右,在BMMY培养基中表达的蛋白能够结合在CM阳离子交换层析柱上(上样缓冲体系为pH7.2的TrisHcl),这是正常的。但是,在FBS培养基(invitrivogen公司提供的配方)中表达的蛋白只能部分结合在CM阳离子交换层析柱上,而另外一部分在上样穿出中(电泳检测结果),将穿出上样DEAE阴离子交换层析柱,目的蛋白任然穿出。各位谁遇到过类似问题,望赐教。
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fei1226com[使用道具]
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分析可能原因:
1 样品电导太高,可调整到2ms/cm左右
2目的蛋白跟杂蛋白粘连,可加入1mM β-ME
另:不知你的DEAE是在什么条件下做的,目的蛋白pI是9.6啊,千万别认为挂不上CM就一定能挂上DEAE。
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plaa[使用道具]
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非常谢谢!电导肯定没问题,第二个原因倒是有可能,如果目的蛋白跟杂蛋白粘连,加入1mM β-ME就能打开吗?
CM穿出直接上的DEAE,没有改变条件。
有没有可能FBS培养基中有什么成分影响到目的蛋白结合CM柱?或者Tris缓冲体系本身有什么问题?
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zsxan1990[使用道具]
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非常谢谢!电导肯定没问题,第二个原因倒是有可能,如果目的蛋白跟杂蛋白粘连,加入1mM β-ME就能打开吗?
CM穿出直接上的DEAE,没有改变条件。
有没有可能FBS培养基中有什么成分影响到目的蛋白结合CM柱?或者Tris缓冲体系本身有什么问题?
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fei1226com[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 zsxan1990 于 2014-3-15 10:20 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

非常谢谢!电导肯定没问题,第二个原因倒是有可能,如果目的蛋白跟杂蛋白粘连,加入1mM β-ME就能打开吗?
CM穿出直接上的DEAE,没有改变条件。
有没有可能FBS培养基中有什么成分影响到目的蛋白结合CM柱?或者Tris缓冲体系本身有 ...

那当然是挂不上DEAE了,你的蛋白pI是9.6,而你的样品pH7.2,你说能挂上去吗?
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fsdd817[使用道具]
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不知道你的发酵上清上柱之前是怎样处理的,另外等电点是9.6左右是软件预测出来的么?阳离子交换一般的缓冲体系是PB,Tris-HCl用的不多。
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plaa[使用道具]
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我一开始是怀疑,穿出中的目的蛋白可能与结合在柱子上的并非一种物质,等电点可能并非9.6,所以我将穿出上DEAE看是不是能结合在DEAE上。但现在HPLC测定它们在同一个位置上。
将结合上在阳离子柱上的目的蛋白纯化所得的纯品,等电聚焦测定其pI点确实在9.6左右。发酵液上清在上阳离子柱之前脱盐处理过了,电导应该没有问题。缓冲体系会有影响吗?如
果是缓冲液的问题,为什么目的蛋白会一部分结合阳离子柱一部分不结合呢?



将阳离子穿出的液过DEAE柱看能否挂柱,这样做有意义么?如果穿出,那很正常,因为目的蛋白PI - pH=2.4。如果能挂柱,只能证明穿出蛋白PI<pH。对过离子交换,疏水层析,亲和层析等吸附与解吸过程的分离方法而言,穿出少量目的蛋白也在正常情况,如果想使目的蛋白尽可能挂在柱上其他因素也很重要,比如流速,温度等等。
另外, 在进行离子交换时,如果缓冲离子所带电荷与离子交换剂上的功能集团相反,将参与离子交换过程,并可能对局部pH产生影响,因此尽可能采用与功能基团带同种电荷缓冲离子,即:使用阴离子交换剂时选择带正电荷的缓冲液;使用阳离子交换时选择负电荷缓冲离子。


[ 本帖最后由 kent 于 2014-3-15 10:25 编辑 ]
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qhyu[使用道具]
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是不是上样量超出柱载量。穿出液有没有分步收集?可以看看开始穿出的和后来穿出的比例是不是有所变化。
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