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标题:【求助】不同的抗体能否同时孵育

89tongzijun[使用道具]
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【求助】不同的抗体能否同时孵育


向各位战友请教一下,我现在做WB ,内参是GAPDH,40KDa,目的蛋白是200KDa左右的,各自的一抗和二抗均不同,试问能否可以一起孵育,会不会有交叉反应而影响结果?还有就是我目的蛋白最后曝光结果:有非特异性条带,色深,而目的条带色很浅,请教各位问题主要处在哪?一抗是多抗,是不是因为抗体特异性差?谢谢各位帮忙!
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bamboo16[使用道具]
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不要一起孵育,可以用剥离Buffer处理后再加另外一种抗体,在同一张膜上显色,配方园子里有;
多抗是有可能有多条带的,和它是多克隆抗体有关,特异性差,会有交叉反应。
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锤子[使用道具]
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你可以根据marker,直接将膜剪开,分别上不同的抗体,事半功倍,还省去了strip的步骤,而且内参结果肯定比strip要好。你不妨试试。我一直都是这么做的。
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89tongzijun[使用道具]
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谢谢各位!
我又做了一次 ,结果还是非特异性条带深,大概在60KDa处,而目的蛋白很淡,几乎没有;内参估计估计是给转过了,这次转了1h 10min。
重新裂解蛋白单纯做了电泳,考马斯亮兰染色后发现:200KDa处蛋白条带本身就特别淡,是不是我细胞裂解又问题啊?我目的蛋白是多聚体,是否因为裂解过强而使多聚体降解了?实验涉及的是软骨细胞,目的蛋白是蛋白多糖,裂解液是成品RIPA.
请各位再帮帮忙,有做相关方面的请多多指教。多谢了。
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glass[使用道具]
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应该可以,我师姐有将actin和目的蛋白条带一起孵,有出来结果。
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glass[使用道具]
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谢谢各位!
我又做了一次 ,结果还是非特异性条带深,大概在60KDa处,而目的蛋白很淡,几乎没有;内参估计估计是给转过了,这次转了1h 10min。
重新裂解蛋白单纯做了电泳,考马斯亮兰染色后发现:200KDa处蛋白条带本身就特别淡,是不是我细胞裂解又问题啊?我目的蛋白是多聚体,是否因为裂解过强而使多聚体降解了?实验涉及的是软骨细胞,目的蛋白是蛋白多糖,裂解液是成品RIPA.
请各位再帮帮忙,有做相关方面的请多多指教。多谢了。
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蛋白提取怎么样肯定可以摸索条件和跑胶看到结果的,至于你想一起孵育目的蛋白和内参,我觉得在一张膜上肯定是不可取的,鉴于你的两个蛋白分子量相差太大,一起转膜在剪开膜做不同抗体孵育也不是好办法,因为蛋白相差太大,无法兼顾两个蛋白都转移充分,他们时间肯定是相差两倍以上,而且在同一浓度的PAGE胶上也不可能都能很好的分开,而你又不愿跑两块胶,所以,为了节约样品,同时保证内参的绝对真实性,我觉得你最好用梯度胶,这样才能分开小分子量的内参,也能分开大分子量的目的蛋白,梯度胶可以买也可以自己配,建议最下面倒12.6%的上面倒7.5%,再加上5%的积层胶,跑完以后依据预染MAKER位置将胶划开分别转膜,时间以各自的分子量设定,以后就常规做法了
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89tongzijun[使用道具]
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谢谢前辈指点,我决定将内参和目的蛋白分开跑胶和转膜。我们目前用半干转系统,是不是半干转对大分子的转膜效果不太好,有人建议用湿转,但本实验室湿转坏了,很无奈。
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glass[使用道具]
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分离大分子蛋白的确湿转比半干转效果好,但我们隔壁实验室用半干转200KD的蛋白效果还是可以,所以你就最好用预染MARKER调整好转膜条件,预祝实验顺利!
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喵咪[使用道具]
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还是想办法用湿转吧,分子量太大了,干转效果不好,尤其是这个蛋白丰度不是太高的时候。
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89tongzijun[使用道具]
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谢谢各位!
请问 ,他们用的是百分之几的分离胶?我用5%的跑,结果发现Marker大分子量的几乎看不到了。今天用湿转试了一次转膜效果还不错,WB也有条带了,但因Marker看不清,所以无法确定条带是否是我们的目的蛋白。
WB做了快两个月了,还是没出结果,都快没耐心了,准备缓一缓过完年再继续,但愿能有点进展。
再次感谢各位热心的战友。
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