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标题:【求助】2-D奇怪问题求教

8黑眼圈8[使用道具]
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【求助】2-D奇怪问题求教


我是2-DE菜鸟小妹,今天才做第一次。结果发现我昨天配的两管再水化液(含有IPG buffer),各2.5ml,-20保存,有一管冻住了一管还是液态,很是费解,因为以前没有经验所以只好又重新配了才用。
另外,还有个问题,手册上说让在使用之前每2.5ml加7mgDTT,可是我的胶条13cm,每次水花液只用250ul,该怎么加DTT呢?如果以2.5ml为单位加,在冻存后能再使用吗?
还在资料上看到说裂解液也要现用现配,若是-20保存融化后就不能再冻存了,是这样吗?这样不是很费IPG buffer?裂解液里可不可以不加IPG buffer?
问题太菜了,大家不吝赐教啊!!!感谢!!!
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xiaoxiaoniao[使用道具]
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Q:我是2-DE菜鸟小妹,今天才做第一次。结果发现我昨天配的两管再水化液(含有IPG buffer),各2.5ml,-20保存,有一管冻住了一管还是液态,很是费解,因为以前没有经验所以只好又重新配了才用。
A:我觉得可能没有完全混匀,两管成份不同。
Q:另外,还有个问题,手册上说让在使用之前每2.5ml加7mgDTT,可是我的胶条13cm,每次水花液只用250ul,该怎么加DTT呢?如果以2.5ml为单位加,在冻存后能再使用吗?
A:2.5ml加7mgDTT,那250ul当然就加0.7mgDTT喽,不过有点太少了,基本上称不出来,你可以考虑用DTT储液,或者直接配到水化液中,效果是一样的,不用每次都现配的。
Q:还在资料上看到说裂解液也要现用现配,若是-20保存融化后就不能再冻存了,是这样吗?这样不是很费IPG buffer?裂解液里可不可以不加IPG buffer?
A:冻存几次不影响效能的,裂解液要加IPG buffer的,帮助蛋白溶解和稳定蛋白的等电点。楼主可能理解有个错误,DTT和IPG buffer不用只算到水化液,而是按你裂解液和水化液混合后的体积算DTT和IPG buffer就行了
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楼上还真迅速啊,刚发就回了,感激!不过,我那两管的确是一个配方啊。anyway,还是谢谢赐教,我会在后面实验中注意的
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我是2-DE菜鸟小妹,今天才做第一次。结果发现我昨天配的两管再水化液(含有IPG buffer),各2.5ml,-20保存,有一管冻住了一管还是液态,很是费解,因为以前没有经验所以只好又重新配了才用。

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不知你配溶液的水是什么水,去离子水?双蒸水?你的试剂纯度很高,质量很好吧? 如果是这样,那么一点都不用担心,这只能说明你的试剂和水都太干净了,一点晶核都没有:)楼主不妨将没有冻上的管子用力甩几下,可能瞬间就冻上了。但这不影响效果的,放心吧!
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okhaha[使用道具]
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另外,还有个问题,手册上说让在使用之前每2.5ml加7mgDTT,可是我的胶条13cm,每次水花液只用250ul,该怎么加DTT呢?如果以2.5ml为单位加,在冻存后能再使用吗?

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建议你买Amersham的Destreak reagent,它是液体的,主要成分是DTT,还有其他一些去除点脱尾的试剂,你只需要向水化液中加几ul即可,很方便。
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okhaha[使用道具]
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还在资料上看到说裂解液也要现用现配,若是-20保存融化后就不能再冻存了,是这样吗?这样不是很费IPG buffer?裂解液里可不可以不加IPG buffer?
问题太菜了,大家不吝赐教啊!!!感谢!!!

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这要根据你的蛋白浓度具体情况具体分析了。如果蛋白浓度很高,在做银染时,上样体积很少(几ul至十几ul),则裂解液中不加IPG buffer 也行。但如果蛋白浓度低,上样体积很大,就需要加了,否则会干扰水化液中IPG buffer的浓度,影响等电聚焦。
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哇,楼上说得很详细啊,不过我甩过我的再水化液,还是没变化呀,水是是去离子的,试剂纯度还可以,不知为何碰见这种怪现象啊,不过,昨天已经做完第一次2D了,正在脱色,期待结果ing...
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8黑眼圈8[使用道具]
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今天有结果了,感觉我的样品裂解液还是有问题,我提的是植物蛋白,染出来小分子量蛋白很少,几乎没有,觉得不对,酸性大分子量的蛋白很多,聚集在一起,垂直方向有些脱尾,不知道是什么原因,下午附图上来,请大家帮忙分析分析
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8黑眼圈8[使用道具]
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这是第一次做的结果,感觉好像第二向没跑开似的,上样量大概400ug,是不是太大了?IEF程序:
30V 15h
500V 500vhr
1000V 1000vhr
8000V 11250vhr
8000V 4000vhr


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xiaoxiaoniao[使用道具]
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8000V 4000vhr ?
少打了个零?
上样量大了
另外个人感觉除此之外好像还有问题需要解决
尤其是纵向
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