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标题:【求助】提出的蛋白太黏稠如何做?

dmg[使用道具]
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【求助】提出的蛋白太黏稠如何做?

小弟提蛋白的时候裂解液加少了,结果刮下蛋白后非常黏稠,有点像鼻涕了:(超声6次后离心14000g 6min,根本没有看见沉淀,就是黏稠一团,吸都吸不开。
请问我这个蛋白还能够做WB么?现在已经放入低温冰箱了,能否在做之前拿出来重新超声10次再离心,最后定量呢?
有没有人可以给予帮助
小弟跪谢先啦
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wawa[使用道具]
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裂解配方是否含有一些必要的成分,比如说去垢剂,盐离子浓度,蛋白酶抑制剂等,MgCl2 CaCl2等
其他引起粘稠的最主要的原因是核酸和蛋白混在一起,可以试着加点核酸酶,降解掉核酸,释放蛋白。
不过看楼主的描述,我觉得这个“粘稠的鼻涕”,有点夸张啊,超过俺的想象范围,呵呵
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wawa[使用道具]
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另外如果是做WB的话,给个建议,直接将细胞加了SDSpage的loading buffer,超声一下,然后直接加热,让蛋白都变性,离心后就可以上样跑电泳了
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dmg[使用道具]
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我买的是RIPA裂解液,PMSF的终浓度大于1mM。也不知道是不是由于加少的原因
楼上所说的是另外一种提取蛋白的方法,但是就我这种情况,应该如何补救呢?
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wawa[使用道具]
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加样品等体积的2X的loading buffer,然后超声,然后煮沸
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dmg[使用道具]
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哦?wawa学长的意思是:下次从冰箱中拿出这次提取的黏稠蛋白,加入上样buffer后再超声?请问这么做的原因是什么呢?如果先超声再离心,然后加上样buffer煮沸与您说的差别在哪里呢?
谢谢赐教:)
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正常得蛋白不会有像你所说得那种“鼻涕”,怀疑你提得蛋白是否是“糖”
造成得原因也不应该是你所说得裂解液+少了造成得
检查你得试验
等你的好消息
good luck!!!!!!
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dmg[使用道具]
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怎么会是糖呢?昨天也用这种同样的试剂和方法提就提得很好。应该是密度大的原因,不过肯定是要试一下的。就是不知道到蛋白定量的时候如果吸不上来应该怎么办了?
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会不会是由于裂解液加入的量太少,加上超声波破碎不够,导致核酸没有断裂,与蛋白交缠在一起。
另外如果要做western-blot,建议加完Loading buffer后,上样前高速离心以下,不然的话可能电泳效果很差,反正如果没有溶解在Loading buffer里的蛋白也不能进胶。
good luck!
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dmg[使用道具]
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是啊,我觉得是裂解液加入的量太少了,超声了6次,这个应该还是正常。
请问我在加入loading buffer前还能够超声10次再离心然后定量麽?
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