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标题:【求助】帮我看看western那里出错了

bamboo16[使用道具]
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【求助】帮我看看western那里出错了


这是我做的akt的western,同样的步骤p-akt做出来了但akt没出任何结果,请各位帮忙分析一下。我的步骤如下:
1.浓缩胶4% 100v 20min,分离胶12% 160v 3h
2.NC膜,100mA,半干转 1.5h
3.4%山羊血清封闭 37度 1h
4.一抗是羊抗人的akt,1:500稀释,4度过夜
5.HRP标记的兔抗羊的二抗 1:400稀释,37度 1h
6.DAB显色
任何条带也不出,整个膜都是花的,到底是哪出错了?


[ 本帖最后由 bamboo16 于 2014-5-8 17:41 编辑 ]


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2014-5-8 17:41
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vvmmoy[使用道具]
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同样的样品蛋白 做内参照看看~~
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zhenxin[使用道具]
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这个样子一般是封闭不够充分导致的,建议更换为脱脂奶粉;另外增加洗膜时间和次数。
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bamboo16[使用道具]
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转膜过程会不会也不妥,这样的条件还可以吗?
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yonger[使用道具]
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一抗的来源是羊(山羊or绵羊?),封闭液最好选择其他种属的,不然加了抗羊的二抗后,不出高背景才怪,同意三楼的观点,可用脱脂奶粉,或者BSA;
像一楼说得做个内参,可看看你的蛋白是否降解;
另外可同时做个阳性对照,看看你操作的环节有无问题;
再者,p-akt如果表达比较高的话,那么akt由于被磷酸化了表达必然较低,加大上样量试试。
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QUOTE:
原帖由 yonger 于 2014-5-8 17:44 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

一抗的来源是羊(山羊or绵羊?),封闭液最好选择其他种属的,不然加了抗羊的二抗后,不出高背景才怪,同意三楼的观点,可用脱脂奶粉,或者BSA;
像一楼说得做个内参,可看看你的蛋白是否降解;
另外可同时做个阳性对照,看看你操作的环节有无 ...

这我可不太同意。并不能说磷酸化蛋白高了总蛋白就会低,主要是取决于两个抗体各自的结合位点。例如一个是在N端,另一个在C端,那么磷酸化就绝对不会影响到对总蛋白的检测。
另外二抗1:400,存在疑问。就我所见到过的二抗而言,如果用ECL一般是在5000:1-10000:1之间,DAB则加一倍,在2500-5000之间。用400:1似乎太大了,也可能是背景太高的原因之一。
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是不是拿胶片的手套上有水或者显影剂?
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bamboo16[使用道具]
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二抗是按说明书稀释的,我又做了一次,转膜时间换为150ma 1.5h,用3%BSA封闭,结果还是没有,膜还是花的?
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bamboo16[使用道具]
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这我可不太同意。并不能说磷酸化蛋白高了总蛋白就会低,主要是取决于两个抗体各自的结合位点。例如一个是在N端,另一个在C端,那么磷酸化就绝对不会影响到对总蛋白的检测。

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akt蛋白的总量应该是一样的,但是磷酸化和非磷酸化的状态是动态平衡的,p-akt要是高的话,akt就会低,这个我们当时跑磷酸化的蛋白时已经验证过了,设过几个不同的浓度梯度,在磷酸化蛋白丰度非常高的组,非磷酸化的基本不出;不管抗体结合的是N端还是C端,检测的蛋白应该是样同的。不大家有何高见。
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bamboo16[使用道具]
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二抗是按说明书稀释的,我又做了一次,转膜时间换为150ma 1.5h,用3%BSA封闭,结果还是没有,膜还是花的?

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膜是什么膜,若是PVDF膜没有用甲醇活化好做出来也是花的,最好把过程说得详细一些,比如蛋白分子量大小、胶的浓度、转膜是否充分,做个内参看看是否有带等。
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