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标题:【求助】细胞破碎后分离蛋白的方法

雪花子[使用道具]
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【求助】细胞破碎后分离蛋白的方法


请问各位战友,我用5000r/min的速度来沉淀蛋白,再跑非变性胶,但什么都没有,怎么回事啊,我该用多少的速度来沉淀阿
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flower-201[使用道具]
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你破碎的是什么细胞,会不会降解?
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雪花子[使用道具]
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我破碎的是e.coli细胞
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hold住[使用道具]
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离心时间多久?5000r/min,5min应该就有沉淀了。如果只是想要收菌检测是否表达,尽可以10000rpm离心1min就可以了,高速又不会对蛋白有什么损害的。而且,菌体沉淀是肉眼可以看到的呀。
所以电泳没有东西(什么都没有),电极有没有接反了?loading buffer有没有问题?
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fsdd817[使用道具]
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同意楼上的说法
尽可以10000rpm离心1min就可以了,高速又不会对蛋白有什么损害的
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kuohao17[使用道具]
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请问各位战友,我用5000r/min的速度来沉淀蛋白,再跑非变性胶,但什么都没有,怎么回事啊,我该用多少的速度来沉淀阿

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您是沉淀蛋白呢还是沉淀破碎的细胞?
5000 rpm,g force是多少呢?rpm没有多大意义;
什么也没有?是什么情况?
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tangxin_80[使用道具]
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细胞破碎所选用的方法很重要,如果是超声破碎蛋白会很容易分离出.注意超声时间.如果想要离心破碎的细胞内容物离心选择,10000rpm 5min.去定量跑SDS电泳,跑时可以观察MARKER有无,来判断你所配制的胶是否成功^.^
PS:你的5000RPM沉淀中不是蛋白吧,破碎的细胞沉淀里面或许有你需要的蛋白(不太可能),但含量微少,大部分应该在上清中。
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yjf1026[使用道具]
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e.coli细胞表达的蛋白如果是包涵体才会沉淀,可溶的肯定在上清。一般情况下沉淀和上清都要跑电泳去验证,包涵体和可溶表达有可能同时存在,也有可能相互转化。
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moonlight45[使用道具]
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QUOTE:
原帖由 yjf1026 于 2014-5-15 15:16 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

e.coli细胞表达的蛋白如果是包涵体才会沉淀,可溶的肯定在上清。一般情况下沉淀和上清都要跑电泳去验证,包涵体和可溶表达有可能同时存在,也有可能相互转化。 ...

如果是膜蛋白,而重悬buffer里面没有合适的detergent的话,也是会在沉淀里面的。
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