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标题:【求助】提取的总蛋白浓度总是很低

finger[使用道具]
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【求助】提取的总蛋白浓度总是很低


各位大侠:
小弟欲做结肠组织中的NOS(一氧化氮合酶),用的碧云天的裂解液(中型)(严格按照其说明书操作),每个组织标本加1ML裂解液时,用玻璃匀浆器冰上匀浆约5min,然后离心12000转/分,取上清夜,总蛋白浓度约为1微克/微升,上样量为30微克时,actin条带很清楚,但NOS一片空白,(一抗购自cell signal,最新购买),怀疑是上样量较少,于是第二次做了一个上样梯度,分别上样30,40,50,60微克,可还是只有actin没有NOS,仍然怀疑上样量不够,可是由于总蛋白浓度较低,上样量为60微克时大概需要50微升左右,小弟于是重新取标本,重新匀浆,这次每个标本加裂解液300微升(其余步骤同前),但是总蛋白浓度仍然约为1微克/微升?真是郁闷啊,这是什么原因啊?为何加1毫升和加300微升的裂解液得到的总蛋白浓度却是这么相近呢?有没有什么好办法可以提高总蛋白浓度?听同学说他们的浓度大概在20微克/微升呢
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avi317[使用道具]
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按照你的情况,可能是组织裂解不充分,蛋白没有释放完全所致。在不影响实验的前提下,可以试试更强的裂解液或延长裂解时间。另外不知你有没有加入蛋白酶的抑制剂,如果没加的话应该加入。
NOS条带出不来,我估计不是上样量的问题了,因为你已经上了60微克,理论上已经很多了。你可以考虑一下是不是western-blot的其它环节出了问题。
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finger[使用道具]
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3
 

裂解液购自碧云天,匀浆前3分钟左右向里面加入了PMSF(按照他们说明书来的)
其他环节如果出问题的话为何actin的结果能出来啊?而且我用了marker,在NC膜上很清楚
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kswl870[使用道具]
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我也觉得不是上样量问题。看看转膜和抗体。
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youyou99[使用道具]
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actin 是丰度很高的一种参照蛋白
对实验条件并不挑剔
而目的蛋白就不一样了,一抗,二抗的稀释浓度等等都有决定权哦
~ 祝顺利
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finger[使用道具]
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小弟的一抗购自cell signal(晶美公司代理的),二抗是购买抗体时精美送的,一抗浓度按照说明书推荐1:1000,二抗1:10000,昨天又做了一次,压片30min才隐约看到NOS的条带,呜呜
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glass[使用道具]
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再摸一下一抗、二抗的浓度,或许会有改善
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DDD[使用道具]
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首先,总蛋白浓度太低肯定有问题。很可能是手动匀浆得不充分,组织块没有研碎,建议尝试电动匀浆器或超声破碎。或者自己配以下裂解液。
其次,建议降低一、二抗的稀释浓度,一抗从1:200试起,二抗用1:2000。Cell signal的一抗应该还是挺不错的。
此外,核对一抗体说明书,该抗体是否只针对人源样品,对鼠源样品是否有特异性?
祝实验顺利。
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