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标题:【求助】SDS电泳问题

okhaha[使用道具]
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【求助】SDS电泳问题


本人表达了一个膜蛋白,复性,浓缩后直接上SDS检测,但是sds上根本看不出条带,整个泳道弥散,感觉象是烧胶,降低上样量后,出现了类似彗星状的条带,很奇怪.明天准备降低电泳缓冲液的sds浓度以及降低电泳温度试试,大家还有什么高招?
我的样品里有1%的中性表面活性剂,对电泳有影响吗?
Happy Xmas
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duoduo[使用道具]
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看起来像上样前样品没有经过处理,最好是先加上样缓冲液煮5min然后离心后再上样。一般SDS和温度对SDS-PAGE影响不大。
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shenkunjie[使用道具]
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我第一次跑SDS-PAGE胶时,也遇到过你这样的情况,可能有几个原因:
1.想楼上所说的,你可能是没有在上样前处理样品。一般是蛋白样品:4×loading buffer(3:1)。第一次沸水中煮8-10min,以后每次上样前煮5min,高速离心1min后上样。
2.也可能是你上样体积过大,浓缩效果不好。是否减少上样量。如果你的蛋白样品浓度过低,可以用冻干法冻干后再溶增高浓度。或者,你可以适当增长你的浓缩胶的长度,一般是齿梳下1cm,可以适当延长至1.5cm-2cm,延长样品浓缩时间。
3.如果还不能解决,在浓缩过程中,也可以降低浓缩的电压,一般为80V,不过我做过降低为60V,效果不错。可供参考。
最后,祝你成功。
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问下楼主,你浓缩时候用什么方法?
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ending[使用道具]
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样品没有处理好或者上样量太大了
脱盐并减少上样量试一下
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okhaha[使用道具]
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非常感谢各位,我表达的这个蛋白是一个膜蛋白的膜结构域部分,有β barrel的结构,完整蛋白复性后,sds电泳的时候根本不存在现在这种情况,所以我怀疑是β barrel的影响.在sds电泳中,复性后的蛋白和包涵体有明显的迁移率差异,这也是我估计复性率的根据,所以我的样品不能变性处理.
to bacteria_virus
大量浓缩用vivi cell 100ml每次,小量用cenmicron 0.5ml每次.
happy new year
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okhaha[使用道具]
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今天用了2%SDS的缓冲液,降低了电压以及电泳温度,从预染marker的表现看有微弱的烧胶现象,分离胶和积层胶处有大量的蛋白聚集,看来是个难缠的蛋白.
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wood533[使用道具]
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我觉得电泳的电压和温度对条带有影响,我也出现过楼主的问题,调低电压,冰上电泳,并且在电泳过程中一直注意电流要尽量稳定。后来这个问题就解决了。
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xue258[使用道具]
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大量浓缩用vivi cell 100ml每次,小量用cenmicron 0.5ml每次.
vivi cell 和cenmicron 是什么东西?望指点,谢谢
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