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标题:【求助】做WB遇见特奇怪的难题!

wood533[使用道具]
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1
 

【求助】做WB遇见特奇怪的难题!


我做WB快两年了,以前一直都很好,跑出来的条带都很亲清晰,不过最近的结果太差了,找了好久的原因也没找到,请有经验的不吝赐教:
我以前用的是25mM Tris,192mM glycine,20%甲醇,100V转膜80分钟,一直结果都不错,87KD的蛋白Marker很清晰
可是最近突然就不清晰了,而且是高分子量的和低分子量的同时不清晰(甚至没有条带);
我换了电转槽,还是不行,后来我改成横流90mA分别跑了3个小时和5个小时,结果小分子量的还可以,87KD的和以前相比差很多,而且3个小时和5个小时的结果没有太大的差别,应该不是时间不够;
我又跑了140mA的条件,结果没有什么改变,还是不行;
后来我改用48mM Tris,39mM glycine,20%甲醇试了不同的电流和时间,87KD的效果还是和以前相差很多;
附:前段时间出现过一次这样的事情,因为原来用的是25mM Tris,192mM glycine,10%的甲醇,后来把甲醇的含量提高到20%后结果明显变好了,可是刚过一个月又不行了,还是高低分子量都不好。
问题是:到底是哪里出了错呢?做了好几年了,为什么现在就不行了呢,以前一直都很好啊。
请大家不吝赐教!多谢!
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yjf1026[使用道具]
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先把药品重配,排除药品问题。
用的膜和以前的是一样的吗?不同批次不同品牌的膜还是有一些差距的。
膜在用之前的甲醇活化时间也是很重要的,可以试试把甲醇活化的时间延长一下。
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wood533[使用道具]
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3
 

我后面做实验的时候用的缓冲液都是现用现配的(怕是缓冲液的问题);
用的膜都是一个公司的,而且是以前的是同一卷(PVDF);
膜的活化都是在无水甲醇里10秒,纯水中泡10分钟,然后在电转移缓冲中平衡20分钟以上,应该没有问题的,以前一直都是这样操作的啊.
还想问一个事情:12%的胶当溴酚兰刚好跑到胶的底部时候,和溴酚兰在差不多位置的蛋白能有多少KD?
多谢各位了!!
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tuuu2[使用道具]
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是不是你Marker过期了?
和溴酚兰差不多的,大概是几个K,在它上面一点的是10K
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wood533[使用道具]
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5
 
Marker才用了不久,而且是分装后放在-70度保存的,每次拿出来一两管放在-20度取用,并且电泳胶上条带是清晰的,应该没问题吧?
我的溴酚蓝跑出去后10KD还离最下面有0.5--1CM,是不是丙烯酰胺和双丙烯酰胺的比例不对,从而使胶的浓度不对啊?
即使是胶的浓度不对的话对转膜的影响有那么大吗?电泳能在胶里分离的很清晰就应该可以转到膜上吧?
有具体做过这样试验的吗?说说看。
谢谢!
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tuuu2[使用道具]
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6
 

都差不多是半厘米左右
胶不是你自己配的吗?我的是29.2:0.8,定容100ml
转膜的效果跟你的胶浓度没有多大的关系,主要的还是蛋白的参数
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7
 

关于膜的甲醇处理,国内好像都是写的甲醇活化30s,但是好多国外的资料都写的要活化20~30min的,我们做的时候也感觉甲醇活化时间足够的话转出来的结果不是很好(但不排除是实验室差异问题),所以如果可能的话我觉得你试一下多泡一会儿。
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wood533[使用道具]
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8
 
我昨天转了两张(一张8%的和一张12%的,都是用的Marker上的样),有一张(12%的)的效果还可以,8%的效果不是很好,(两张膜是在一个电转槽里同时转的),我现在怀疑是不是PVDF膜的原因(膜的均一性),不过没有确切的把握,今天又跑了个大槽的,还在等结果。
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wood533[使用道具]
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9
 
我也同意站友的说法(转膜和胶没有太大的关系),不过觉得条带的位置不是很对,想确定一下,昨天又新配置了胶。
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wood533[使用道具]
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我看过的资料大部分都是用甲醇活化10几秒,没有看见过时间太长的,我以前在另一个公司做的时候也是活化10几秒,来到这家公司时他们也是活化10几秒,您做过活化10多分钟的吗?效果怎么样?
今天和经理讨论了一下,他让我明天做一个在缓冲液里不放甲醇的(我做过的都是放10%----20%的甲醇),我估计效果应该很差,怕蛋白固定不到膜上,你们做过在缓冲液里不放甲醇的条件吗?如果做过给指点一下。
多谢两位!
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