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标题:【求助】有关电泳的问题

ns5fan[使用道具]
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【求助】有关电泳的问题


我用7.5%的胶分离脑脊液蛋白,胶聚合得还好,可是在200伏电压,50mA条件下,溴芬兰跑不动,仍在原地。仔细观察了一下,加样孔内没有气泡,另外我用的是北京六一的电泳仪,请问是怎么回事?谢谢!
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redbutterfly[使用道具]
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"加样孔内没有气泡",不太清楚了,一般我都是注意电极缓冲液槽内的,也就是铂金丝周围是否有气泡.
我大概的提出几点,希望有用:
(1)电极被过分氧化了或两个电极根本没有接通,通电不畅,无电流.
(2)电极缓冲液是否已经加够了,至少要上槽没过点样孔和下槽要高出底线均在1cm左右.
(3)胶版是否已经夹紧了,是否有电极缓冲液渗透,导致上槽缓冲液渐渐的减少,最后,低于点样孔.
(4)电极缓冲液失效了.
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mysmdbl[使用道具]
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补充一下:
1.电极被氧化是一个方面,再看看你的电极线,是不是有断路的地方,换电极线一试就知道了。
2.你的电极缓冲液配错了,重新配制电极液,这要确保你所用试剂没有过期失效的。
3.至于发生漏液,肉眼很容易就看到了,低于加样孔,那问题就更好解决了。
4.还有就是胶有问题也会影响导电的,看看配胶试剂是不是存在过期失效的。
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ns5fan[使用道具]
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谢谢上楼战友的指点!
  电极缓冲液应该没问题,电流可达75mA,铂金丝周围也有气泡上浮.看来是:"4.还有就是胶有问题也会影响导电的,看看配胶试剂是不是存在过期失效的。"
  所有配胶试剂我们刚刚买的,应该不会过期吧.请问如何检测胶的导电性能?下面是试剂配方,请看看有什么问题?
2  PAGE电泳 
安装垂直板状电泳槽,将10ml 7.5%分离胶注入,待凝胶聚合后,插入样品梳,再注入5ml浓缩胶。聚合后(约30min)取出梳子,对照血清标本以0.3∶1.7稀释,进样20μl,待侧CSF根据UV蛋白定量值,等蛋白量进样约(15μg)70μl。缓缓注入电泳缓冲液,即可电泳。电流30mA,冷却水温4℃,约2.5H。待指示剂至凝胶边缘处,关闭电源,取下凝胶,用考马斯亮兰染色约5min,加脱色液脱色2H即可。
3 试剂配制 
⑴ 3%分离胶缓冲液:(PH8.9, 3M Tris-HCl,4℃保存备用)
Tris 36.34g
H2O 10.15ml
1NHCL 46ml再逐滴加入直调PH9.0为止
H2O 加至100ml
⑵ 电泳分离胶(30ml 7.5%):
PH8.9 HCI-Tris  3.75ml
交联剂(30%) 7.5ml
水   18.3ml
10%APS  0.3ml
TEMED  20μl
⑶ 浓缩胶缓冲液:( PH7.0,0.5M Tris-HC缓冲液,4℃保存备用)
Tris 6.057g
H2O 约20ml
1NHCL 38ml再逐滴加入直调PH7.0为止
H2O 加至100ml
⑷ 浓缩胶(10ml 3%):
PH7.0 HCI-Tris 1.25ml
交联剂(30%) 1ml
水 7.64ml
10%APS 0.1ml
TEMED 10μl;
⑸ 上样缓冲液配制: -20℃保存
浓缩胶缓冲液 2.0 ml
87%甘油 1.0 ml
溴酚蓝 0.1 mg
H2O 加至10ml
⑹ 30%单体母液: 4℃保存备用一个月
丙烯酰胺 30 g
双丙烯酰胺 0.8 g
H2O 加至100ml
⑺电极缓冲液:用时稀释10倍
甘氨酸 28.8g
Tris 6g
H2O 至1000ml水中
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summerxx[使用道具]
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师兄,你的分离胶的 Tris_Hcl缓冲液的浓度太高了,应该是PH8.8 1.5MTris_Hcl,其它都正常。
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summerxx[使用道具]
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对了,你的电极缓冲液:用时稀释10倍
甘氨酸 28.8g
Tris 6g
H2O 至1000ml水中
我不是那么用的,5倍电极缓冲液:用时稀释5倍
甘氨酸 93g
Tris 15.1g
SDS 5g
H2O 至1000ml水中
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gogo[使用道具]
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在你确保这些无误的情况下检查一下你的电泳槽导电是否良好,不知老兄是用的什么封槽,如果是胶条切记取下,偶第一次做时就忘了去结果怎么都跑不动,换各种溶液最后才发现。。。呵呵祝顺利!
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ha111[使用道具]
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借该贴顺便问一下各位,如何加电泳缓冲液,可使胶底下不出现气泡?或有什么好办法除去气泡?
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ha111[使用道具]
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还有个问题,跑电泳时,溴酚蓝蓝色指示条带下面还有一粉红色带,请问是怎么回事?两颜色带之间有一小段距离。谢谢
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changlhsyo[使用道具]
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借该贴顺便问一下各位,如何加电泳缓冲液,可使胶底下不出现气泡?或有什么好办法除去气泡?、

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用注射器把底部的水吸干,然后再用注射器向其中加水,直至没有气泡为止。
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