小中大数百万年来原核生物如大肠杆菌就经常相互分享它们的遗传物质的——受到自然的启发,出现了将DNA导入哺乳动物培养细胞的技术——这是分子生物学的又一个重要的里程碑。也多谢这种技术的不断进步,我们终于可以在各种哺乳动物细胞中进行各种克隆化基因的表达,从而达到不同的目的--比如,生产制备大量经过真核特有的翻译后加工的活性蛋白;研究表达蛋白的结构和生化特性;研究基因表达的调控机理;甚至调控基因的表达等等。可以说在哺乳动物细胞中表达外源基因的2个关键:一个是选择构建合适的表达载体和表达细胞株,另一个就是选择合适的方法将克隆的基因导入培养细胞中进行表达。
转染技术的广泛使用促进了人们对外源基因在哺乳动物细胞中的表达等方面的认识,并在方法学上促进了该领域及相关领域的发展。从磷酸钙到脂质体,到多胺,可用于转染的细胞种类已越来越多,转染试剂也不断更新换代,而转染也不再仅限于将DNA转入细胞中了,RNA,siRNA,蛋白质等等生物大分子也进入了转染的行列。
DEAE-葡聚糖(Diethylaminoethyl (DEAE)-dextran):这个早在1965年出现的转染方法差不多是最古董级的方法之一了,直到现在竟然还有少数人坚持采用。带正电的DEAE-葡聚糖或polybrene多聚体可以结合带负电的DNA分子,使得DNA复合物结合在带负电的细胞表面。通过使用DMSO或甘油获得的渗透休克,也可能是细胞内吞作用,使得DNA复合体进入细胞。DEAE-葡聚糖仅限于瞬时转染,可重复性好,转染时要除掉血清。
磷酸钙共沉淀转染:最早是在1973年开始采用的。氯化钙+DNA+磷酸缓冲液按一定的比例混合,形成的极微小的磷酸钙-DNA复合物沉淀粘附到细胞膜表面,借助内吞作用进入细胞质。沉淀颗粒的大小和质量对于转染的成功至关重要,pH值,钙离子浓度,DNA浓度,沉淀反应时间,细胞孵育时间乃至各组分加入顺序和混合的方式都可能对结果产生影响,重复性不佳。现在还会操作这种古董级方法的人怕已经不多啦。比起DEAE法这个更容易得到稳定转染,但是转原代细胞比较困难的。
电穿孔法:通过短暂的高场强电脉冲处理细胞,沿细胞膜的电压差异会导致细胞膜暂时穿孔。DNA被认为是穿过孔扩散到细胞内。电脉冲和场强的优化对于成功的转染非常重要,因为过高的场强和过长的电脉冲时间会不可逆地伤害细胞膜而裂解细胞。理论上说电穿孔法可用于各种细胞,而且不需要另外采购特殊试剂。可是需要昂贵的设备——这个一次性投资可不便宜,而且每次转染需要更多的细胞和DNA——因为细胞死亡率高。每种细胞电转的条件都需要进行多次优化。
脂质体:中性脂质(lipid)是利用脂质膜包裹DNA,借助脂质膜将DNA导入细胞膜内。带正电阳离子脂质体(Cationic liposomes)则不同,DNA并没有预先包埋在脂质体中,而是带负电的DNA自动结合到带正电的脂质体上,形成DNA-阳离子脂质体复合物,据认为一个约5kb的质粒会结合2-4个阳离子脂质体,从而吸附到带负电的细胞膜表面,经过内吞被导入培养的细胞。脂质体转染方法始于1987年,这个方法的出现使得转染效率、转染的稳定性和可重复性大大提高,并广为使用。阳离子脂质体细胞毒性相对较高,对不同的细胞可能会干扰细胞的代谢。血清的存在有可能会影响转染效率,需要进行优化。通常转染试剂有不同脂质(lipid)和脂质体(liposome)混合配方。
非脂质体的脂质(Non-liposomal lipids):这个读着颇为拗口的新一代技术,代表着脂质体技术的未来发展方向——革新配方成分形成胶束(micellar)结构而非简单的双层膜结构,令核酸传递更有效率而且细胞毒性也显著降低。
磷酸钙共沉淀转染:最早是在1973年开始采用的。氯化钙+DNA+磷酸缓冲液按一定的比例混合,形成的极微小的磷酸钙-DNA复合物沉淀粘附到细胞膜表面,借助内吞作用进入细胞质。沉淀颗粒的大小和质量对于转染的成功至关重要,pH值,钙离子浓度,DNA浓度,沉淀反应时间,细胞孵育时间乃至各组分加入顺序和混合的方式都可能对结果产生影响,重复性不佳。现在还会操作这种古董级方法的人怕已经不多啦。比起DEAE法这个更容易得到稳定转染,但是转原代细胞比较困难的。
电穿孔法:通过短暂的高场强电脉冲处理细胞,沿细胞膜的电压差异会导致细胞膜暂时穿孔。DNA被认为是穿过孔扩散到细胞内。电脉冲和场强的优化对于成功的转染非常重要,因为过高的场强和过长的电脉冲时间会不可逆地伤害细胞膜而裂解细胞。理论上说电穿孔法可用于各种细胞,而且不需要另外采购特殊试剂。可是需要昂贵的设备——这个一次性投资可不便宜,而且每次转染需要更多的细胞和DNA——因为细胞死亡率高。每种细胞电转的条件都需要进行多次优化。
脂质体:中性脂质(lipid)是利用脂质膜包裹DNA,借助脂质膜将DNA导入细胞膜内。带正电阳离子脂质体(Cationic liposomes)则不同,DNA并没有预先包埋在脂质体中,而是带负电的DNA自动结合到带正电的脂质体上,形成DNA-阳离子脂质体复合物,据认为一个约5kb的质粒会结合2-4个阳离子脂质体,从而吸附到带负电的细胞膜表面,经过内吞被导入培养的细胞。脂质体转染方法始于1987年,这个方法的出现使得转染效率、转染的稳定性和可重复性大大提高,并广为使用。阳离子脂质体细胞毒性相对较高,对不同的细胞可能会干扰细胞的代谢。血清的存在有可能会影响转染效率,需要进行优化。通常转染试剂有不同脂质(lipid)和脂质体(liposome)混合配方。
非脂质体的脂质(Non-liposomal lipids):这个读着颇为拗口的新一代技术,代表着脂质体技术的未来发展方向——革新配方成分形成胶束(micellar)结构而非简单的双层膜结构,令核酸传递更有效率而且细胞毒性也显著降低。