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标题:【转帖】细胞培养技巧

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【转帖】细胞培养技巧


一、细胞培养基本概念   细胞培养是指从体内组织取出细胞摹拟体内出现环境,在无菌、适当温度及酸碱度和一定营养条件下,使期生长繁殖,并维持其结构和功能的一种培养技术。细胞培养的培养物为单个细胞或细胞群。   在医学遗传学研究中应用最广泛的是外周血淋巴细胞、皮肤或纤维细胞和各种能在体外长期生长的细胞系。外周血淋巴细胞培养具有时间短、技术简便、可重复取材等优点,它在临床染色体分析中使用最广泛。体外培养细胞株可在培养过程中发生自发的或在外界作用下的转化,成为永久细胞系,也可直接建成永久细胞系,永久细胞系能在体外无取制的传代和生长。永久细胞系通常具有非整倍体细胞和各个细胞的核型不完全相同特征。但细胞克隆的细胞系其这一特征可以不明显。 二、细胞培养的环境   细胞在体外培养中所需的条件与体内细胞基本相同。   1、无污染环境   培养环境无毒和无菌是保证细胞生存的首要条件。当细胞放置于体外培养时,与体内相比细胞丢失了对微生物和有毒物的防御能力,一旦被污染或自身代谢物质积累等,可导致细胞死亡。因此在进行培养中,保持细胞生存环境无污染、代谢物及时清除等,是维持细胞生存的基本条件。   2、恒定的温度   维持培养细胞旺盛生长,必须有恒定适宜的温度。人体细胞培养的标准温度为36.5℃±0.5℃,偏离这一温度范围,细胞的正常代谢会受到影响,甚至死亡。培养细胞对低温的耐受力较对高温强,温度上升不超过39℃时,细胞代谢与温度成正比;人体细胞在39-40℃1小时,即能受到一定损伤,但仍有可能恢复;在40-41℃1小时,细胞会普遍受到损伤,仅小半数有可能恢复;41-42℃1小时,细胞受到严重损伤,大部分细胞死亡,个别细胞仍有恢复可能;当温度在43℃以上1小时,细胞全部死亡。   3、气体环境   气体是人体细胞培养生存必需条件之一,所需气体主要有氧气和二氧化碳。氧气参与三羧酸循环,产生供给细胞生长增殖的能量和合成细胞生长所需用的各种成分。开放培养时一般把细胞置于95%空气加5%二氧化碳混合气体环境中。   二氧化碳既是细胞代谢产物,也是细胞生长繁殖所需成分,它在细胞培养中的主要作用在于维持培养基的PH值。大多数细胞的适宜PH为7.2-7.4,偏离这一范围对细胞培养将产生有害的影响。但细胞耐酸性比耐碱性大一些,在偏酸环境中更利于细胞生长。有资料显示,原代羊水细胞培养PH6.8时最适。   细胞培养液PH浓度的调节最常用的为加NaHCO3的方法,因为NaHCO3可供CO2,但二氧易于逸出,故最适用于封闭培养,而羟乙基哌嗪乙硫磺酸(HEPES)因其对细胞无毒性,也起缓冲作用,有防止PH迅速变动的特性而用于开放细胞培养技术中,其最大优点是在开放式培养或细胞观察时能维持较恒定的PH值。   4、细胞培养基   培养是既是培养细胞中供给细胞营养和促使细胞生殖增殖的基础物质,也是培养细胞生长和繁殖的生存环境。培养基的种类很多,按其物质状态分为半固体培养基和液体培养基两类;按其来源分为合成培养基和天然培养基。   (1)合成培养基:合成培养基是根据细胞所需物质的种类和数量严格配制而成的。内含碳水化合物、氨基酸、脂类、无机盐、维生素、微量无素和细胞生长因子等。单独使用细胞虽有生存但不能很好的生长增殖。   (2)天然培养基:使用最普遍的天然培养基是血清,基本以小牛血清最普遍。血清由于含有多种细胞生长因子、促贴附因子及其多活性物质。与合志培养基合用,能使细胞硕利增殖生长。常见使用最为5-20%。 三、细胞培养设施和基本条件   1、实验室设计   细胞培养是一种无菌操作技术,要求工作环境和条件必须保证无微生物污染和不受其它有害因素的影响。细胞培养室和设计原则是防止微生物污染和有害因素影响,要求工作环境清洁、空气清新,干燥和无烟尘。细胞培养工作包括:工作液配制、无菌操作(采样)、温育、无菌处理,细胞和用品贮存等。细胞培养室的设计实施原则一般是无菌操作区设在室内较少走动的内侧,常规操作和封闭培养于一室,而洗刷消毒在另一室。   2、常用设施及设备   (1)超净工作台:也称净化工作台,分为侧流式、直流式和外流式三大类。   (2)无菌操作间:一般由更衣间、缓部间和操作间三部分组成。操作间放置净化工作台及二氧化碳培养箱、离心机、倒置显微镜等。缓冲间可放置电冰箱、冷藏器及消毒好的无菌物品等。   (3)操作间:普通培养箱、离心机、水浴锅、定时钟、普通天平及日常分析处理物品。   (4)洗刷消毒间:烤箱、消毒锅、蒸馏水处理器及酸缸等。   (5)分析间:显微镜、计算机及打印机等。   3、培养器皿   细胞培养以玻璃器皿为主,常准备最需是使用最的三倍。器皿应选择透明度好、无毒、中性硬度玻璃制品。常用的玻璃器皿有下面几种。   (1)液体储存瓶:用于储存各种配制好的培养液、血清等液体,常以500ml、250ml、100ml生理盐水瓶或血浆瓶代替。   (2)培养瓶:根据培养细胞种类要求不同培养瓶的形态各异,用于细胞传代培养的细胞要求瓶壁厚簿均匀,便于细胞贴壁生长和观察,瓶口要大小一致,口径一般不小于1cm,允许吸管伸入瓶内任何部位,规格有200ml、100ml、50ml、25ml、10ml等几种。用于外周血培养的常用10ml普通圆瓶。两种培养瓶均要求选用优质玻璃制成。   (3)培养皿:用于开放式培养及其它用途。分直径30mm、60mm、120mm等几种。   (4)吸管:常用的有长吸管和短吸管两类,长吸管也称刻度吸管。其改良后管上部有球型刻度称改良吸管,刻度吸管用于移动液体。常用1ml和10ml两种。短吸管也叫滴管,分弯头和直头两种。   (5)离心管:离心管是细胞培养中使用最广泛的器皿,根据用途不同形态各样,常用于细胞培养的离心管有大腹式尖底离心管和普通尖底离心管两类。前者分别为50ml、30ml、15ml;后者则多为10ml和5ml。   (6)其它:如三角烧瓶、烧杯、量筒、漏斗、注射器等。 四、培养细胞形态   体外培养细胞根据它们在培养器皿是否能贴附于支持物上生长特征,可分为贴附型生长和悬浮型生长两大类。贴附型细胞在培养时能贴附在支技物表面生长。如羊水细胞为贴附型细胞,常表现为成纤维型细胞和上皮细胞生长。悬浮型细胞在培养中悬浮生长。
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1、成纤维型细胞   在培养中的细胞凡形态与成纤维细胞类似时,皆可称之为成纤维细胞。本型细胞由形态与体内成纤维细胞的形态相似而得名,细胞在支持物表面呈梭形或不规则三角形生长,细胞中央有卵园形核,胞质向外伸出2-3厘米个长短不同的突起,除真正的成纤维细胞外,凡由中胚层间质起源的组织细胞常呈本类形态生长。   2、上皮型细胞   此类型细胞在培养器皿支持物上生长具有扁平不规则多角形特征,细胞中央有园形核,细胞紧密相连单层膜样生长。起源于内、外胚层细胞如皮肤、表皮衍生物、消化管上皮等组织细胞培养时,皆呈上皮型形态生长。   3、游走型细胞   本型细胞在支持物上散在生长,一般不连成片。细胞质经常伸出伪足或突起,呈活跃的游走或变形运动,速度快且不规则。此型细胞不很稳定,有时亦难和其它型细胞区别。在一定的条件下,由于细胞密度增大联成片后,可呈类似多角型或成纤维细腻包形态。常见于羊水细胞培养的早期。 五、培养细胞形态分析   培养细胞随贴附支持物形状不同而形态各异,最常见的是贴附于平面支持物细胞。在一般光镜下生存中的细胞是均质而透明的,结构不明显。细胞在生长期常有1-2个核仁在细胞机能状态不良时,细胞轮廓会增强,反差增大。若胞质中时而出现颗粒、脱滴和腔泡等,表明细胞代谢不良。 六、培养用品的清洗与消毒   目前我国细胞培养器皿主要仍使用能反复使用的玻璃器皿,清洗的主要目的为清除杂质和微生物,使在器皿内不残留任何影响细胞生长的成份。因而在组织细胞培养中清洗和消毒是一项极为重要的环节。   (一) 清洗   在组织细胞培养中,体外细胞对任何有害物质都非常敏感。微生物产品附带杂物,上次细胞残留物及非营养成分的化学物质,均能影响培养细胞的生长。因此对新使用和重新使用的培养器皿都要严格彻底的清洗,且要根据器皿的组成材料不同,选择不同的清洗方法。   1、玻璃器皿的清洗   组织细胞培养中,使用量最大的是玻璃器皿,故工作最最大的是玻璃器皿的清洗。一般玻璃器皿的清洗包括浸泡、刷洗、侵酸和冲洗四个步骤。清洗后的玻璃器皿仅要求干净透明无油迹,而且不能残留任何物质。   (1)浸泡:初次使用和培养使用后的玻璃器皿均需先用清水浸泡,以使附着物软化或被溶液掉。新的初次使用的玻璃器皿,在生产及运输过程中,玻璃表面带有大量的干固的灰尘,且玻璃表面常呈碱性及带有一些对细胞有害的物质等。新瓶使用前应先用自来水简单刷洗,然后用稀盐酸液(5)浸泡过夜,以中和其中的碱性物质。再次使用的玻璃器皿则常附有大量刚使用过的蛋白质,干固后不易洗掉,故用后要立即浸入水中,且要求完全浸入,不能留有气泡或浮在液面上。   (2)刷洗:浸泡后的玻璃器皿一般要用毛刷沾洗涤剂刷洗,以除去器皿表面附着较牢的杂质。刷洗要适度,过度会损害器皿表面光泽度。   (3)浸酸:清洁液是由重铬酸钾、浓硫酸和蒸馏水按一定比例配制而成,其处理过程称为浸酸。清洁液对玻璃器皿无腐蚀作用,而其强氧化作用可除掉刷洗不掉的微量杂质。清洁液去污能力很强。是清洗过程中关键的一环。浸泡时器皿要充满清洁液,勿留气泡或器皿露出清洁液面。浸泡时间一般为过夜,不应少于6小时。 清洁液可根据需要,配制成不同的强度,常用的下列三种: 重铬酸钾(g) 浓硫酸(ml) 蒸馏水(ml) (A)强清洁液 63 1000 200000 B)次强清洗液 120 200 1000 (C)弱清洁液 100 100 100   清洁液配制时应注意安全,须穿戴耐酸手套和围裙,并要保护好面部及身体裸露部分。配制过程中可使重铬酸钾溶于水中,然后慢慢加浓硫酸。并不停的用玻璃棒搅拌,使产生的热量挥发,配制过程中可使重铬酸钾溶于水中,然后慢慢加浓硫酸。并不停的用玻璃棒搅拌,使产生的热量挥发,配制溶液应选择塑料制品。配成后清洁液一般为棕红色。   (4)冲洗:玻璃器皿在使用后,刷洗及浸泡后都必须用水充分冲洗。使之尽量不留污染或洁液的残迹。冲洗最好用洗涤装置。即省力、效果又好。如用手工操作,则需流水冲洗十次以上,每天水须灌满及倒干净,最好用蒸馏水清洗3-5次,晾干备用。   2、胶塞的清洗   细胞培养中所用的橡胶制品主要是瓶塞。新购置的瓶塞带有大量滑石粉及杂质,应先用自来水冲洗,再做常规处理,常规清洗方法是:每次用后立即置入水中浸泡,然后用2% NaOH或洗衣粉煮沸10-20分钟,以除掉培养中的蛋白质。自来水冲洗后,再用1%稀盐酸浸泡30分钟或蒸馏水冲洗后再煮沸10-20分钟,晾干备用。   3、塑料制品的清洗   塑料自制品现多是采用无毒并已经特殊处理的包装,打开包装即可用,多为一次性物品。必要时用2% NaOH浸泡过夜,用自来水充分冲洗,再用5%盐酸溶液浸泡30分钟,最后用自来水和蒸馏水冲洗干净,晾干备用。
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十四、染色体实验技术分析   染色体分裂指数低:患者处于非常时期(感染期、放、化疗期):            培养基营养成份不良;            培养基PH偏低或偏高;            PHA过量或不足;            小牛血清质量不高;            小牛血清数量偏低或过高;            培养温度不稳定;            培养箱温度偏低;            秋水仙素处理时间过短;            离心时间或速度不足;            制备过程损失过大。   染色体形态不理想:受检者处于非常时期;            PHA过量;            小牛血清质量不高;            培养箱温度不恒温;            秋水仙素量不当;            低渗时间不理想;            低渗温度过高;            离心速度过高;             固定液加速过快;            固定混匀手法过重;            吹片技术不良。   染色体形态偏长: 培养基PH偏酸;            秋水仙素量偏低;            秋水仙素处理时间偏短;   染色体形态偏短: 培养基PH偏碱;            秋水仙纱处理量过量;            秋水仙素处理时间过长。   染色体分带不良: 血液状况不良;            培养基营养成分不良;            小牛血清质量不高;            小牛血清数量不当;            培养箱培养温度不良;            秋水仙素处理量过高;            PHA量过高;            低渗处理时间或温度不良;            胰酶质量不良;            染色液质量不良;            染色技术不良;            分带技术不佳。   染色背景不良:  培养细胞生长不良;            低渗处理技术不良;            离心过程尘染;            分带技术不良;            染色技术不良;            染色液尘染;            载玻片处理不干净;            制片过程尘染;            存片环境不干净。   培养失败:    培养中损失;            血源质量不良;            培养中感染;            小牛血清污染;            培养箱温度失控;            PHA过期或过量;            秋水仙素失效;            低渗失败;            离心机失误。   标本损失:    培养中损失;            制备中损失;            分带中损失; 保存中损失; 十五、染色体分带技术   染色体显带技术是在显示染色体基础上发展起来的技术,其优点是能显现染色体本身更细微的结构,有助于更准确地识别每条染色体及染色体异常疾病。染色体分带技术能适用于各种细胞染色体标本。   染色体显带是沿着整条染色体的长轴,能显现出着色深浅不同、横向走的带型。目前认为染色体显带现象是染色体结构所致。但用特殊方法处理后,再用染料染色,则带型更加清晰,随显带方法不同,显现出的带型的特点也不一样,这说明带的出现与染料的特异结合相关。人类染色体能显现出近2000个G带,这些带再融合成一般显微镜下可见的850条左右的高分辩染色体带型或350条带左右的常规带型。 常见的几咱显带方法: (一)、G带   也称为G显带,是最常用的显带方法,具有操作简便、经济及标本能长期保存等优点。 1、Giemsa原液的配制:   (1)称3.75gGiemsa粉置研磨器中,加少许丙三醇研磨,研磨越细越好;   (2)将研细的Giemsa加丙三醇移入500ml棕色瓶内,丙三醇的总量为250ml,用一定量甲醇洗干净研磨器。   (3)摇匀,置60℃水浴锅24小时或37℃温箱72小时,经常摇动。   (4)取出冷却后,加甲醇总量至250ml混匀,密封棕色瓶备用。贮藏时间越长,染色效果越好。 2、实验材料:   中期染色体标本;   0.9%氯化钠注射水;   3%tris液体;   0.25%胰蛋白酶;   Gremsa染色液;   蒸馏水;   水浴锅;   立式染缸;   定时器或时针;   温度计;   镊子及纱布;   刻字笔; 3、操作程序:   (1)消化液配制:取0.9%氯化钠注射水100ml,加0.25%胰蛋白酶1ml,制成0.025%胰蛋白酶盐水消化液,加4-5滴tris液调PH6.8左右,移消化液于立式染色缸并置37℃水浴锅中备用;   (2)染液配制:取立式染缸,加蒸馏水500ml,加3滴tris液调PH并加入Giemea染液1ml左右,用吸管调匀备用;   (3)漂洗液:取立式染缸一个,内加蒸馏水备用;   (4)试消化:待消化液温度在37℃左右时,取同批标本较多者标本1张,分二节或三节进行消化,每节相差十五秒左右,从45秒或60秒开始增减。取出后先在纱布或吸水纸上直立除去带出胰蛋白酶,后置蒸馏水染缸内漂洗,取出后,标本斜面朝上,刮去染色缸内染液上浮膜,沿槽插入,每分钟移动1次,染色3-5分钟。   (5)洗片:从染色缸中取出标本玻片,自来水冲洗,取刻编号面朝上用纱布干净玻片背部染色,稍干,高倍镜下观片,确定分带与染色时间。   (6)分带:取4张待分带标本玻片,细胞面朝左侧按顺序插入37℃的消化液中,消化时间较试消化选择时间延长5-10秒钟,取出每片间隔时间约10秒钟左右。   (7)消化及染色调整:每次消化完一批标本后,需加入配好的消化液25ml于消化缸中,下次消化时间不变。同样,每次染色一批标本后加Giemsa染色液2-3滴,调匀,每次染色时间不变;   (8)Giemsa染色调整:若Giemsa染色标本偏红,说明染色液偏酸,可加tris数滴调蓝,若Gremsa染色标本偏蓝则说明tris加多了;   (9)保存:将分好带的及观察中的标本及时收集于玻片盒内保存,防止细胞涂面灰尘污染及擦损。   注意:Giemsa消化染色过程中,有两个重要的环节,一是胰酶消化环节,消化不足带不出现,消化过度染色体变得膨胀和不着色,必须把握好胰酶浓度、消化时间和消化温度;二是预处理或老化环节,对消化和带型清晰度有很大影响,其中80℃2小时热处理,是简便易行和效果较好的办法。 (二)姐妹染色单体分化染色   姐妹染色单体差别染色可使中期染色体显示深浅不同的两条单体,能借以观察姐妹染色单体互换(SCE)现象。SCE是两条染色单体在DNA合成中核苷酸序列发生互换而表现出来一种现象。即是细胞分裂是DNA同源重组的结果。SCE既是一种无害的变化(有生理波动),也可受射线、致突和致癌物三因素等作用而升高。SCE一定成度反映细胞的损伤与修复状态。 
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1、原理:   在细胞培养过程中,加入一定是的5-溴脱氧尿苷(BudR ),当细胞在DNA复制过程时,BudR能作为核苷酸的前体取代胸腺嘧啶而被掺入到新合DNA中。因此,当细胞处于第二个分裂周期时,同一染色体的两条姐妹染色单体,一条由双股都含有BudR的DNA链构成,而另一条为单股含有BudR的DNA链。在结构上双股含BudR的DNA螺旋化程度较低,故对染色剂亲合力低,在用Giemsa染色时其单体着色浅,只有单股含BudR的DNA链组成的单体则着色深而形成差别着色。 2、BudR贮存液的配制:   BudR 5mg(先用0.5ml 1N NaOH溶解)   然后加蒸馏水至 5ml   即成1000ug/ml的贮存液,因BudR遇光会发生分解,贮存液需置棕色瓶并黑纸封瓶避光冰冻保存。 3、实验材料:   所检培养细胞;   BudR贮存液;   2×SSC液;   常规染色体制片所需物品;   水浴锅;   20W紫外灯一个;   培养皿;   镜头纸; 4、操作程序   (1)BudR掺入:细胞培养24小时后于培养液中加入BudR,最终浓度5-15mg/ml,避光条件下继续培养。   (2)终止培养:待细胞经历两个细胞周期(48小时),培养终止前3小时加秋水仙素,秋水仙素终浓度为0.02ug/ml培养液;   (3)常规制片及烤片;   (4)紫外灯照射:取标本玻片置于大号培养皿内,正面朝上,上覆盖镜头纸,从玻片外镜头纸边沿加2×SSC液致使全镜头纸浸湿,移入50-60℃水浴锅内,紫外线灯距离5cm,照射30-40分钟;   (5)染色:取出照射后标本,蒸馏水冲洗,置PH6.8的2%Giemsa染色15分钟;   (6)洗片及存片:同G带片   注意:BudR是一种强突变剂,使用浓度不宜过高,否则会产生细胞毒性作用。 (三)染色体脆性部位(fra)   脆性位点也称危性部位,是在一定的培养条件下人类染色体上某些特异位点非随机地表现出的裂隙和断裂。脆性部位分为普通型和罕见型两大类。 1、实验材料   (1)常规外周血所用物品。   (2)培养基是用不含叶酸的MEM-Fra培养基或低叶酸的CT199培养基。 2、培养液配制   MEM-Fra 90-95%   小牛血清 5-10%   双抗 100u/ml   PH调至7.5左右 3、操作程序   与制备外周血的染色体方法相同。   注:脆性X综合症:(FraX)   这种染色体改变是在1969年被发现,1977年被定位于Xq27、记录为fra(X)(q),并命名为脆性部位。X连锁智力低下(MR)与fra(X)(q27)密切相关。FraX的发生率占新生儿的1/2500;占X连锁MR病1/2-1/3;占男性MR的1-2%;其发生率仅次于先天愚型。
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