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标题:[未解决]用HPLC-ECD分析样品出现分裂峰

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siyuruchou[使用道具]
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用HPLC-ECD分析样品出现分裂峰

流动相0.1M柠檬酸,0.1M乙酸钠,100uM EDTA, 0.01%SOS (5%甲醇)
1.出峰时候还是随着时间往后移(例如第一针4分出峰,第二针4.5分出峰,第三针4.8分出峰)
2.峰有拖尾现象
3.有分裂峰(重新培养品,还是有分裂峰),检查了柱子,很干净

本人菜鸟不会再帖子中传图片,只能上传附件了,请各位大侠指点

图是相同样品同一浓度的两次图(图一没有加5%甲醇,图二加了5%甲醇)
(pump: waters 1525
   ECD: water 2465
   column: ODS)


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2011-6-16 10:35
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2011-6-16 10:35
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ttkl533[使用道具]
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回复 #1 siyuruchou 的帖子

1.出峰时候还是随着时间往后移(例如第一针4分出峰,第二针4.5分出峰,第三针4.8分出峰)
2.峰有拖尾现象
3.有分裂峰(重新培养品,还是有分裂峰),检查了柱子,很干净


1、
这种情况下,保留时间呈递增,有四原因。
a、柱温为控制。保留时间随环境变化而变化,高温,保留时间缩短,反之延长。
b、流动相组分变化,如蒸发,又如沉淀。蒸发使甲醇比例降低,流动相洗脱能力减弱,保留时间延长;蒸发沉淀等变化,使流动相pH发生改变,若样品酸性,pH降低,保留时间延长,若样品碱性,pH升高,保留时间延长。样品中性,pH几乎无影响。
c、色谱柱键合相流失。(检查柱效)
d、硅胶柱活性点变化。(加三乙胺或碱,钝化可避免)

2、
峰拖尾,这种情况下,原因可能为
a、柱超载。(降低进样量)
b、色谱柱硅羟基作用。(加三乙胺,屏蔽硅羟基活性)
c、柱坍塌。(检查柱效)

3、
原因:
1、进样体积过大。
2、进样量过载。
3、柱坍塌。
4、进样器损坏。(更换进样转子)


综上。。。不用俺总结了吧。。。。
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fjdlgldg[使用道具]
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峰分裂可能是样品浓度太大。
你做的流动相里有离子对试剂EDTA,柱子需要的平衡时间较长。柱没平衡,故出峰不正常。
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siyuruchou[使用道具]
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回复 #2 ttkl533 的帖子

多谢指点。
我们现在用的柱子是15厘米*4.6毫米的,柱体积应该是1.5毫升,我们进样20微升应该没有问题吧。(博士后之前让我进10微升,但是让指导我做实验的前辈给否了,但我进20微升)
另外,我们检查了柱子似乎没有坍塌。。。可不可能是因为长期用缓冲溶液柱子有无机盐沉积造成的(我们一直只用甲醇洗柱子),正确清洗一下柱子是不是有效,应该如何操作?
另外您说的:“硅胶柱活性点变化。(加三乙胺或碱,钝化可避免)”和“色谱柱硅羟基作用。(加三乙胺,屏蔽硅羟基活性)”,我没懂,是在流动相中家吗?三乙胺是碱性的吧,可是我们要用PH3.5的酸性缓冲液
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siyuruchou[使用道具]
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回复 #3 fjdlgldg 的帖子

样品浓度太大时什么意思?还是进样量太大了?浓度过大的话,不是应该出一道水平的线吗?
另外我查资料,工作电压400mV以上,EDTA会影响出峰,我们用的电压是800mV,会不会有影响
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thereyoube[使用道具]
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此外还有一些原因会导致上面的问题:
1.系统漏液;
2.尽量避免使用强溶剂溶解样品,会导致峰变形或分叉;
3.使用合适pH的溶剂,避免使样品在溶剂中既有离子态又有分子态,这样也会导致峰分叉或变形。
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shengfengyu[使用道具]
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第一次分析这个样品吗?检查了柱子,很干净,是怎么检查的?
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ttkl533[使用道具]
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回复 #4 siyuruchou 的帖子

另外您说的:“硅胶柱活性点变化。(加三乙胺或碱,钝化可避免)”和“色谱柱硅羟基作用。(加三乙胺,屏蔽硅羟基活性)”,我没懂,是在流动相中家吗?三乙胺是碱性的吧,可是我们要用PH3.5的酸性缓冲液 流动相酸性,加三乙胺那就算了。还有一种改善拖尾的方法就是加入缓冲盐,但你的盐浓度已经非常高了,一般也就0.01M~0.02M左右。
可不可能是因为长期用缓冲溶液柱子有无机盐沉积造成的(我们一直只用甲醇洗柱子),正确清洗一下柱子是不是有效,应该如何操作?
缓冲盐要正确使用啊。使用不当,堵塞色谱柱填料基质间空隙,会使柱压升高保留时间缩短柱效下降的。。。缓冲液使用后,色谱柱先用大比例水冲洗,再改用大比例有机相清洗。譬如:90/10(1h)——10/90(30min+)。。。再保存色谱柱。
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fjdlgldg[使用道具]
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回复 #5 siyuruchou 的帖子

我的意思是:你的进样量太大,柱过载了。
相关液相的书籍以及有经验人士的总结,流动相里含EDTA的柱子需要很长时间来平衡
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xiongwei397[使用道具]
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柱温稳定吗 溶剂密封情况
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