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标题:有对RT、PCR问题感兴趣的筒子们吗?欢迎参与哈

阿拉蕾[使用道具]
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有对RT、PCR问题感兴趣的筒子们吗?欢迎参与哈

笨人今日开帖,有定量PCR相关的问题可以提问,
如果有类似/雷同的问题~~~~~~·实属巧合~~~~··哈哈!

现将收集到的每一页的主要问题整理一下哈~~~~~~~~

Page1:
1.做目的基因表达量分析的简易小流程。
2.什么样的实验数据才是可靠的呢?

Page2:
1.多重PCR与单一PCR仅仅是引物探针设计上的差别吗?
2.选择绝对定量还是相对定量?
3.如何判断体系的阴性对照是否有污染?
4.溶解温度曲线是如何制作的?

Page3:
1. 定量引物与普通引物的设计差异。
2.如何稀释标准品。

Page4:
1.相关系数与斜率的意义。
2.- △△CT法与标准曲线法的比较。

Page6:
1.反转录前应将totalRNA调整的统一且适当的浓度。
2.模板、preMix均不建议用振荡器混匀。

Page7:
1.total RNA无法电泳以及测OD
2.溶解温度曲线有两个峰怎么办?

Page8:
1.一步法试剂盒与两步法选择上有什么差别?
2.cDNA不能测OD。

Page9:
1.△△CT法要求的扩增效率
2.阈值的民间调整法
3.溶解温度曲线的制作过程

Page10:
PCR反应时模板添加量

Page11:
商品化的premix,只选适合自己的。

简单说一下做定量PCR的流程(以RNA起始为例):
1.提取total RNA
针对不同的组织选择不同的试剂盒提取total RNA,尽量严格按照试剂说明书的要求来进行.
提取过后,需要对totalRNA进行质量测定,包括两个部分,一个是1%琼脂糖胶电泳,确定是否降解,一般来说动物组织来源的质量好的total RNA电泳有三条带,28s为最亮,理想情况下接近18s亮度的2倍,5.8s最弱,只是很模糊的一条带;某些植物组织有4条带。并且,如果在电泳前能将total RNA变性一下,跑出来的图片会更漂亮,28S上面是比较干净的。另一方面是测OD,通过OD计算出totalRNA的浓度.一般来说total RNA OD260/280的范围在1.8-2.2之间,都是比较好的.230代表盐离子浓度,260核酸,280蛋白,320背景浑浊度.

2.将total RNA的浓度调至统一的起始量.
计算total RNA的浓度:RNA浓度(μg/μL)=(A260-A320)X稀释倍数X 0.04根据您所选择的反转录(RT)试剂,以及定量PCR试剂对模板浓度的要求,用DEPC处理水把total RNA稀释至统一的浓度.

3.RT&PCR
这两个步骤没什么可说的,按照说明书来做就行.值得注意的是,要尽量避免污染,有条件的话,模板添加区和混合液配置区分开,枪,枪头,tube,什么的全部都分开.实在不行,也要用70%酒精把枪都擦一遍再用.

以上仅仅是个protocol,还有很多细节,待遇到了再详细说.  


[ 本帖最后由 阿拉蕾 于 2011-8-10 17:50 编辑 ]
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菠萝菠萝蜜[使用道具]
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您好!
我做的是普通Taqman探针的相对定量荧光定量PCR, 目的基因:IL-4,内参:beta-actin;仪器用的是ABI公司的7500 Real Time PCR System,经SDS软件自动分析得到下图:
左边是b-actin,由于IL-4的相对定量按照内参的相对定量进行了标准化,所以b-acting的表达水平是0。
右边是经不同处理后的标本,依次记为C1,C2,C3,C4.我将C1作为对照校正,表达水平设为1,取对数后为0,C2,C3,C4皆与C1进行比较,得到图中数字。
图片不是很清晰:(C1=0,C2=-0.802(绿色),C3=0.056(蓝色),C4=-0.486红色)

我要请教的问题是:
1.图中数字的含义是什么? 是直接说明表达量C3>C1>C4>C2吗?还是表示倍数关 系,负号表示降低?
2. 相对定量采用2-△△Ct法,那么图中数字与2-△△Ct是怎么一种关系?

很多不解之处,希望yaoshan和其他战友能帮助解答,十分感谢!
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橘子水儿[使用道具]
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我用荧光定量PCR做snp,用DNA做,结果一直不理想,有一个位点的扩增效率太低,一个溶解曲线为双峰。我怀疑我的引物不是很好,能否给一些建议。十分感谢 !
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阿拉蕾[使用道具]
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回复 #3 菠萝菠萝蜜 的帖子

1.相对定量的柱形图,在取对数之前,是倍数关系,去过对数之后函数关系变成什么样子,是不是还是个倍数关系,请允许我把高中知识都忘光了吧,只记得对数函数是个增函数,其他实在不能回答了.

在0线以下的表示表达量比对照组低,因此那个"-"就表示这个意思.图上确是反应的是C3>C1>C4>C2.

2.相对表达量的分析方法有两种,一种是标准曲线法,另一种就是-△△Ct法.一般来说,后者比较简便,免去很多标准品筛选的麻烦,但是这种方法是有局限性的,把扩增效率默认为1,这样才有底数为2的-△△Ct次幂这么一说.原本的底数应该是(1+E扩增效率)

您图中纵坐标的数据没有什么意义,只是一个倍比的关系,举个例子,(以未取对数前的比值为例)如果C2比C1低100倍,C3比C1高100倍,那么取过对数后,你的纵坐标就变成了正负2.

因此,这个-△△Ct与纵坐标没什么直接的关系.
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HOT兔[使用道具]
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我用荧光定量PCR做snp,用DNA做,结果一直不理想,有一个位点的扩增效率太低,一个溶解曲线为双峰。我怀疑我的引物不是很好,能否给一些建议。十分感谢~~~~~~~~~~
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阿拉蕾[使用道具]
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回复 #6 HOT兔 的帖子

你是用MGB的探针做的SNP检测吗?能否把你的实验详细的说说?当然,保密的东西除外哈~

我最近正在遭遇taqman探针检SNP,呵呵~一起讨论下~~~~·
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@木木@[使用道具]
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缓冲体系不同,主要指的是buffer中各个离子的浓度和PH略有不同.因为普通PCR仪的升降温速度比定量的慢.因此缓冲体系/酶/引物都为适应不同的升降温速度而不同.
reply:本人不同意升降温速率会影响缓冲体系/酶/引物等配比,都是一样的热动力学过程罢了,只不过前者慢,后者快。

定量产物一般都比较端,因此如果把定量的引物放在普通pcr的体系和仪器上做,很可能有许多非特异性的条带产生.同时,我还遇过一次,定量的引物放在普通pcr上做,跑胶看没有任何条带,当换用定量试剂做,结果特别好.
reply:定量的引物放在普通pcr机器上还会出现非特异带?OMG,定量的引物相对普通PCR引物而言,就是强调一个特异性,怎么可能在普通PCR上还会出现杂带呢?事实上,如果是设计很好的定量引物,在跑一般PCR时,那结果是相当的好,呵呵。定量的引物如果扩一般PCR没有而用定量试剂做结果很好,只有2个可能:1、你的PCR体系太烂了。2、定量的试剂由于是通过商业化的优化的,譬如加入甜菜碱、DTT等等东东,特异性和效率都是很不错滴,当然和你的普通PCR没得比。另外,不要忘记了大多数qPCR试剂里面用的都是高效率的热启动酶,这个和普通酶相比还是有很大区别的,我猜你说的这个特例只是酶的差异罢了。

因此,建议大家,在拿到引物和试剂的时候,挑一个样品直接用定量实验来验证引物和反应体系,摸索反应条件.这样做远比先用普通pcr验证引物要有效得多.(这是有时间和金钱的教训在里面的)并且用普通pcr摸索的实验条件放到定量上还是需要重新再摸索.得不偿失,事倍功半.
reply:我的观点和你的相反,刚来的引物,最好上普通PCR或是梯度PCR仪上面摸索最佳的温度和条件,看看跑胶有没有非特异性扩增,然后再做标准曲线来验证。
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大虾米[使用道具]
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我用的是SYBER Green 染料做的,仪器用的是ABI公司的7500 Real Time PCR System。请教一个简单的问题:7500 Real Time PCR System怎样操作?
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阿福[使用道具]
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关于是不是需要普通PCR来先摸定量PCR的条件
可能还和定量PCR的方法有关

如果是探针法,探针是最主要因素,摸条件时不加探针没有意义,加探针那就不必要上普通PCR仪了,如果做的话的确也会出现yaoshan战友说的情况;

如果是染料法,因为PCR引物二聚体、非特异扩增对结果影响较大,而且染料往往比其他试剂贵,个人觉得摸一下也无妨
个人意见,大家继续讨论~
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不懂[使用道具]
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我做过10倍10倍的稀释,可是到达10000倍就没有CT值了,所以才改用的5倍5倍的稀释,我把做定量的PCR拿去跑了个琼脂糖电泳,发现条带都弥散了,现在正在提高退火温度试试效果如何。不知道你们有什么好的建议,分享一下,洗耳恭听。  


[ 本帖最后由 不懂 于 2011-8-9 15:40 编辑 ]
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