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标题:[求助] PCR条带弱

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[求助] PCR条带弱

【求助】PCR条带弱


大家好,我最近在做关于古菌的生态多样性分析,不过在“PCR”这关遇到了很大的问题。主要的问题关于以下几个方面:

(1)PCR扩增之后条带很弱,敝人认为是目的基因量太少的原因,于是又进行了二次PCR,增加模板量,胶纯化产物PCR三种探索,结果条带并没有明显变化,甚至有的条带已经不见了。按理说一次PCR之后,目的基因片段会增加,二次PCR之后会更多,为什么变化不大呢?费解中。。。。

(2)在探索中,有一次,发现对PCR产物稀释100倍,再对其进行PCR,出现了一个很亮的条带,然后又做了一次重复试验,发现竟然又什么条带也没有了。不知道是什么原因。

着急当中,忘各位高手


[ 本帖最后由 miracle 于 2011-9-5 15:16 编辑 ]
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稀释100倍之后PCR出现条带。注意:是否是污染,出现的杂质的条带?再者,你PCR反应体系各原料的浓度对吗?
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你好,稀释100倍之后出现的条带,是做了两个平行,一个有条带,一个没条带,所以可能以为是偶然现象。也有可能是污染。

PCR体系我用的是promga的已经配好的体系,这个是已经优化过的,有没有可能是因为这个体系不是我的古菌PCR。
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+++++++++试试巢式-PCR +++++++++
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个人看法
(1)经过PCR之后目的条带很暗,有很多种因素,就个人经历做如下推测:
1.模板浓度太高或者太低都能导致这种情况,模板浓度太高,在反应体系里可以导致变性后模板链碰撞,减少引物结合。还有就是抽提模板的时候提的不好,蛋白去除不干净或者含有很多抑制PCR反应的离子、分子和试剂残留,这时候你可以用PCR产物回收试剂盒纯化模板。
2.反应体系,镁离子的多少也能影响最终产率,引物的量。另外,常用的30微升和50微升体系也有差别,本人曾经用这两个体系扩增同样的模板,结果差别很大。建议是用随酶提供的建议体系先进行扩增。
3.反应程序,Tm值的确定,循环数,也能影响到最终产量。可以适当提高或降低温度试试,有时候引物需要的实际Tm值并不是引物单子里建议的Tm值。我们实验室常规做法是从Tm值入手,通过梯度PCR,确定合适的Tm值后,再进行其他因素的调节。
4.PCR仪器老化、实验过程中出现污染、引物浓度不对,片段过长时延伸、退火时间太短。
5.检测时上样量太少,检测时做的胶不好,扫胶仪的问题。
(2)二次PCR不能用原PCR产物直接作为模板,要稀释!稀释倍数依据你原产物的浓度来,如果很弱,可以稀释1倍,5倍,很亮,可以稀释10倍,20倍。
不一定增加模板就能解决问题。
如果本来目的条带就很暗,你再去做PCR产物回收,过程中再损耗一点,肯定是少得可怜了。

本人的看法和建议,你如果想通过PCR的方法解决问题,从1-5一个一个因素排除,如果你想快点拿到目的片段,可以考虑以下几个方法:
扩增,如果没有其他大片段的杂带,就去产物纯化,然后做克隆。
扩增,如果有其他大片段杂带,这时候你可以考虑多扩增几管同样的东西,然后合并,浓缩,切胶纯化,做克隆。
扩增,如果没有其他大片段的杂带,多扩增几管同样的东西,合并,浓缩,直接测序。

希望对你有所帮助!
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从您的描述中,可以看出您的主要问题是扩增产率很低,建议您可以做如下优化:

1.检查您的引物的Tm值。考虑可以降低扩增的退火温度;
2.可以增大模板的用量,有可能是样品的浓度过低;
3.模板DNA可能已损伤,建议纯化DNA;
4.延长延伸时间;
5.增加循环数;
6.优化变性温度,使变性更加彻底;
7.您的目的基因有特征吗?诸如GC含量高或者是模板比较复杂,建议您可以根据您的目的基因的特征适当做一些优化,用扩高GC含量的酶,添加DMSO或者加大镁离子的量等。
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多谢各位的不惜赐教。
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