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标题:求助:PCR出现的超大片段异常条带是什么?

丁香@@[使用道具]
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求助:PCR出现的超大片段异常条带是什么?

求助:PCR出现的超大片段异常条带是什么? [转自 丁香园论坛]


PCR之前结果比较稳定,最近一个礼拜PCR结果都出现异常的超大片段条带,不知道是污染还是什么,请各位指教。

照片手机拍的,效果不好,就是给大家看看图中第三道的亮条带。

实验是类似于MLPA的流程,用合成探针杂交基因组DNA,16hr 60度。然后Ligation high连接 30 min,取5 ul 连接产物做PCR,PCR试剂用过Toyobo的KOD PLUS和TAKARA的TAQ,都一样。连接酶用过Ligation High和NEB的Taq Ligase,也一样。

2%琼脂糖电泳,90V 20分钟,左边是TAKARA DL500 MARKER,最亮的是200 bp。第二、四、五道是140 bp大小的目标条带,非引物二聚体。第三道的实验条件跟其他基本一致。最近所有的PCR都出现这个条带,没有其他条带,除了用水做模版时是一片空白外。

请有经验的筒子指点一下哪个条带到底是什么东西,怎么造成的?丁当伺候!

这个条带大小大于基因组DNA的电泳条带,对比过。


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阿拉蕾[使用道具]
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根据我的经验,这个带有可能是蛋白产生的带,因为它就在上样孔的地方。一般有蛋白污染的时候会在上样孔那里有亮的带出现。
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我帮你查到些东西,应该对你有用,因为我不是这个专业的,所以不是太懂,你看看吧~~~~~~~·

pcr产物的电泳检测时间一般为48h以内,有些最好于当日电泳检测,大于48h后带型不规则什致消失。
假陰性,不出現擴增條帶pcr反應的關鍵環節有?模板核酸的制備,?引物的質量與特異性,?黴的質量及活性?pcr循環條件。假阴性,不出现扩增条带pcr反应的关键环节有?模板核酸的制备,?引物的质量与特异性,?霉的质量及活性?pcr循环条件。 尋找原因亦應針對上述環節進行分析研究。寻找原因亦应针对上述环节进行分析研究。
模板︰?模板中含有雜蛋白質,?模板中含有taq黴抑制劑,?模板中蛋白質沒有消化除淨,特別是染色體中的組蛋白,?在提取制備模板時丟失過多,或吸入酚。模板︰?模板中含有杂蛋白质,?模板中含有taq霉抑制剂,?模板中蛋白质没有消化除净,特别是染色体中的组蛋白,?在提取制备模板时丢失过多,或吸入酚。 ?模板核酸變性不徹底。 ?模板核酸变性不彻底。 在黴和引物質量好時,不出現擴增帶,極有可能是標本的消化處理,模板核酸提取過程出了毛病,因而要配制有效而穩定的消化處理液,其程序亦應固定不宜隨意更改。在霉和引物质量好时,不出现扩增带,极有可能是标本的消化处理,模板核酸提取过程出了毛病,因而要配制有效而稳定的消化处理液,其程序亦应固定不宜随意更改。
黴失活︰需更換新黴,或新舊兩種黴同時使用,以分析是否因黴的活性喪失或不夠而導致假陰性。霉失活︰需更换新霉,或新旧两种霉同时使用,以分析是否因霉的活性丧失或不够而导致假阴性。 需注意的是有時忘加taq黴或溴乙錠。需注意的是有时忘加taq霉或溴乙锭。
引物︰引物質量、引物的濃度、兩條引物的濃度是否對稱,是pcr失敗或擴增條帶不理想、容易彌散的常見原因。引物︰引物质量、引物的浓度、两条引物的浓度是否对称,是pcr失败或扩增条带不理想、容易弥散的常见原因。 有些批號的引物合成質量有問題,兩條引物一條濃度高,一條濃度低,造成低效率的不對稱擴增,對策為︰?選定一個好的引物合成單位。有些批号的引物合成质量有问题,两条引物一条浓度高,一条浓度低,造成低效率的不对称扩增,对策为︰?选定一个好的引物合成单位。 ?引物的濃度不僅要看od值,更要注重引物原液做瓊脂糖凝膠電泳,一定要有引物條帶出現,而且兩引物帶的亮度應大體一致,如一條引物有條帶,一條引物無條帶,此時做pcr有可能失敗,應和引物合成單位協商解決。 ?引物的浓度不仅要看od值,更要注重引物原液做琼脂糖凝胶电泳,一定要有引物条带出现,而且两引物带的亮度应大体一致,如一条引物有条带,一条引物无条带,此时做pcr有可能失败,应和引物合成单位协商解决。 如一條引物亮度高,一條亮度低,在稀釋引物時要平衡其濃度。如一条引物亮度高,一条亮度低,在稀释引物时要平衡其浓度。 ?引物應高濃度小量分裝保存,防止多次凍融或長期放冰箱冷藏部分,導致引物變質降解失效。 ?引物应高浓度小量分装保存,防止多次冻融或长期放冰箱冷藏部分,导致引物变质降解失效。 ?引物設計不合理,如引物長度不夠,引物之間形成二聚體等。 ?引物设计不合理,如引物长度不够,引物之间形成二聚体等。
mg2 濃度︰mg2 離子濃度對pcr擴增效率影響很大,濃度過高可降低pcr擴增的特異性,濃度過低則影響pcr擴增產量甚至使pcr擴增失敗而不出擴增條帶。 mg2 浓度︰mg2 离子浓度对pcr扩增效率影响很大,浓度过高可降低pcr扩增的特异性,浓度过低则影响pcr扩增产量甚至使pcr扩增失败而不出扩增条带。
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何去何从[使用道具]
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反應體積的改變︰通常進行pcr擴增采用的體積為20ul、30ul、50ul。反应体积的改变︰通常进行pcr扩增采用的体积为20ul、30ul、50ul。 或100ul,應用多大體積進行pcr擴增,是根據科研和臨床檢測不同目的而設定,在做小體積如20ul後,再做大體積時,一定要模索條件,否則容易失敗。或100ul,应用多大体积进行pcr扩增,是根据科研和临床检测不同目的而设定,在做小体积如20ul后,再做大体积时,一定要模索条件,否则容易失败。
物理原因︰變性對pcr擴增來說相當重要,如變性溫度低,變性時間短,極有可能出現假陰性;退火溫度過低,可致非特異性擴增而降低特異性擴增效率退火溫度過高影響引物與模板的結合而降低pcr擴增效率。物理原因︰变性对pcr扩增来说相当重要,如变性温度低,变性时间短,极有可能出现假阴性;退火温度过低,可致非特异性扩增而降低特异性扩增效率退火温度过高影响引物与模板的结合而降低pcr扩增效率。 有時還有必要用標準的溫度計,檢測一下擴增儀或水溶鍋內的變性、退火和延伸溫度,這也是pcr失敗的原因之一。有时还有必要用标准的温度计,检测一下扩增仪或水溶锅内的变性、退火和延伸温度,这也是pcr失败的原因之一。
靶序列變異︰如靶序列發生突變或缺失,影響引物與模板特異性結合,或因靶序列某段缺失使引物與模板失去互補序列,其pcr擴增是不會成左滿C靶序列变异︰如靶序列发生突变或缺失,影响引物与模板特异性结合,或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列,其pcr扩增是不会成左满C
假陽性出現的pcr擴增條帶與目的靶序列條帶一致,有時其條帶更整齊,亮度更高。假阳性出现的pcr扩增条带与目的靶序列条带一致,有时其条带更整齐,亮度更高。
引物設計不合適︰選擇的擴增序列與非目的擴增序列有同源性,因而在進行pcr擴增時,擴增出的pcr產物為非目的性的序列。引物设计不合适︰选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行pcr扩增时,扩增出的pcr产物为非目的性的序列。 靶序列太短或引物太短,容易出現假陽性。靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。 需重新設計引物。需重新设计引物。
靶序列或擴增產物的交叉污染︰這種污染有兩種原因︰一是整個基因組或大片段的交叉污染,導致假陽性。靶序列或扩增产物的交叉污染︰这种污染有两种原因︰一是整个基因组或大片段的交叉污染,导致假阳性。 這種假陽性可用以下方法解決︰?操作時應小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣槍內或濺出離心管外。这种假阳性可用以下方法解决︰?操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。 ?除黴及不能耐高溫的物質外,所有試劑或器材均應高壓消毒。 ?除霉及不能耐高温的物质外,所有试剂或器材均应高压消毒。 所用離心管及樣進槍頭等均應一次性使用。所用离心管及样进枪头等均应一次性使用。 ?必要時,在加標本前,反應管和試劑用紫外線照射,以破壞存在的核酸。 ?必要时,在加标本前,反应管和试剂用紫外线照射,以破坏存在的核酸。 二是空氣中的小片段核酸污染,這些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。二是空气中的小片段核酸污染,??这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。 可互相拼接,與引物互補後,可擴增出pcr產物,而導致假陽性的產生,可用巢式pcr方法來減輕或消除。可互相拼接,与引物互补后,可扩增出pcr产物,而导致假阳性的产生,可用巢式pcr方法来减轻或消除。
出現非特異性擴增帶pcr擴增後出現的條帶與預計的大小不一致,或大或小,或者同時出現特異性擴增帶與非特異性擴增帶。出现非特异性扩增带pcr扩增后出现的条带与预计的大小不一致,或大或小,或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。 非特異性條帶的出現,其原因︰一是引物與靶序列不完全互補、或引物聚合形成二聚體。非特异性条带的出现,其原因︰一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。 二是mg2 離子濃度過高、退火溫度過低,及pcr循環次數過多有關。二是mg2 离子浓度过高、退火温度过低,及pcr循环次数过多有关。 其次是黴的質和量,往往一些來源的黴易出現非特異條帶而另一來源的黴則不出現,黴量過多有時也會出現非特異性擴增。其次是霉的质和量,往往一些来源的霉易出现非特异条带而另一来源的霉则不出现,霉量过多有时也会出现非特异性扩增。 其對策有︰?必要時重新設計引物。其对策有︰?必要时重新设计引物。 ?減低黴量或調換另一來源的黴。 ?减低霉量或调换另一来源的霉。 ?降低引物量,適當增加模板量,減少循環次數。 ?降低引物量,适当增加模板量,减少循环次数。 ?適當提高退火溫度或采用二溫度點法(93℃變性,65℃左右退火與延伸)。 ?适当提高退火温度或采用二温度点法(93℃变性,65℃左右退火与延伸)。
出現片狀拖帶或狻棱a出现片状拖带或狻棱a
pcr擴增有時出現狻棱a或片狀帶或地毯樣帶。 pcr扩增有时出现狻棱a或片状带或地毯样带。 其原因往往由于黴量過多或黴的質量差,dntp濃度過高,mg2 濃度過高,退火溫度過低,循環次數過多引起。其原因往往由于霉量过多或霉的质量差,dntp浓度过高,mg2 浓度过高,退火温度过低,循环次数过多引起。 其對策有︰?減少黴量,或調換另一來源的黴。其对策有︰?减少霉量,或调换另一来源的霉。 ?減少dntp的濃度。 ?减少dntp的浓度。 ?適當降低mg2 濃度。 ?适当降低mg2 浓度。 ?增加模板量,減少循環次數。 ?增加模板量,减少循环次数。
cuturl('http://translate.google.com.hk/translate?hl=zh-CN&langpair=en%7Czh-CN&u=http://www.protocol-online.org/biology-forums/band.html')
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TAQ酶加太多了,或者是连接酶没有去除干净,总之,八成是蛋白条带。
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1 染料 2 模板中的蛋白 3 模板基因组
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我想应该是形成一个环状结构的可能,如果你在目的片段内有酶切位点的化可以做个酶切就能验证了。
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橘子水儿[使用道具]
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加了loading buffer后,65度处理5分钟,再电泳即可解决问题。
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是残留蛋白
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有可能是基因组DNA
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