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标题:巧用PCR—复杂质粒构建策略中的PCR应用

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巧用PCR—复杂质粒构建策略中的PCR应用

巧用PCR—复杂质粒构建策略中的PCR应用[转载]


复杂的克隆策略是指在一个载体上进行插入、替换或删除等多次重组操作或根据需要从头构建一个质粒载体等操作。对于传统的克隆策略来说,每进行一次插入、替换或删除操作就要进行一次酶切——连接——转化——培养细菌——提质粒——酶切鉴定的循环,费时费力,中间的大部分时间花在等待细菌生长上,效率很低。随着PCR技术的发展和成熟,我们不断地对传统的方法进行改革,使重组质粒的构建不断简化,效率不断提高。
例:变几个相邻片断的多步分别克隆为一步克隆
目的:把A 、B和C三个片断以首尾相接的方式插入质粒载体。
传统方法:首先分别PCR扩增片断A、B、C, 然后克隆片断A,然后克隆片断B,最后克隆片断C。中间需要完成三个酶切——连接——转化——培养细菌——提质粒——酶切鉴定的循环,花在细菌生长上的时间超过60小时。
改进方法:首先分别PCR扩增片断A、B、C, 然后把三个片断分别酶切,在体外连接,以连接产物为模板,以片断A的上游引物和片断C的下游引物为引物进行PCR扩增,把得到的PCR产物一步克隆到质粒载体中。
两种方法所得到的结果是一样的,但是改进方法所化的时间为传统方法的三分之一,只需要一个酶切——连接——转化——培养细菌——提质粒——酶切鉴定的循环。
上述例子只是一个简单的应用,我们实验室在重组质粒构建过程中大量的应用长片段高保真PCR,重组质粒的构建模式发生了很大的改变。随着PCR技术的不断发展成熟(扩增长度、保证性、产量和特异性等),质粒构建过程的大多数细胞内的DNA复制将被PCR这一细胞外的DNA复制所代替,质粒构建效率将有质的飞跃。
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斑竹:
你好!
对于你的这种方法,本人觉得有值得探讨的地方。
如果能使用重组PCR不是更好吗?
每次酶切后回收目的基因,然后是连接,连接之后是电泳回收,最后是PCR,在这个过程中目的基因的损耗会不会很大。  
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我们的方法中连接产物是作为PCR模板使用的,PCR模板对于量的要求是不高的,所以损失点没有关系。
你说的重组PCR是指?英文是?
是利用片断之间的重叠实现小片段的融合还是利用片断和载体之间的重叠实现片断在载体的插入?还是?
请赐教!
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你的方法听起来很好,值得一试,这样可以大大简化复杂的构建工作。谢谢!
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重组PCR:Recombinant PCR
重组PCR——一种快速体外基因重组技术 西安医科大学学报 2001 03
这篇文章没有办法粘贴过来。如果您感兴趣,可以在中国期刊网上查一下。
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小荷尖尖[使用道具]
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我觉得这个方法看上法不错,其实有很多问题。首先,PCR的保真度,PCR产物要测序,这是医学专业所要面对的问题。其次,最大扩增片段的问题,既然复杂,必定不会太小,大于5K吧,要得到完整的东东,可不容易,保真度与扩增效率可是成负相关的。再次,PCR产物转化率要比连接产物的低两个数量级。还有,不论在哪里做实验,还没有说要抢这12小时的必要,可安排其它的并行实验或准备下一步的实验,这样更好。我们要学会“花一年时间画一张画,卖掉只花一天,而并非花一天时间画一张,卖掉确要花一年。”
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首先,这个方法是经过实践检验的方法,在克隆遇到麻烦时曾发挥过非常重要的作用。
其次,PCR长度和保真性,Takara的pyrobest酶产量很好,保真性据说达到了pfu的水平,同一公司的LA高保真酶扩增10kb左右的片段效率不错。这些都是一些积极因素。当然,PCR引入的突变是不得不面对的问题,但是,我们在实际工作中几乎没有发现过象pfu酶这样的高保真酶所引入的突变。
再次,PCR产物转化率要比连接产物的低两个数量级这句话我有些看不懂,我们转化的也是
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小荷尖尖[使用道具]
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PCR产物的连接产物的转化效率,比由大肠杆菌内提取质粒所酶切连接产物的要低两个数量级,这是由于菌体的切酶造成的。至于保真度的问题,有些酶可能还可以。但我用上海生产的pfu酶,效率很低,即DNA产量很低,条件也不容易掌握。而Takara产的ExTaq则效率高,而保真度相对较差。经验表明大约有1kb里有1个突变,普通来说没什么,但对医用蛋白的表达则不允许。至于Takara的pyrobes,我还没有用过,不敢有何评论。
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请教PCR产物连接转化效率低的原因,能给出参考文献吗?扩增质粒用的宿主菌是内切酶缺陷的,如DH5alpha和JM109。pfu产量低,我们一般不用它扩增2Kb以上的片段,takara的pyrobest产量和保真性都好。高保真酶PCR引入突变的概率极低,加之不管是否医用的蛋白基因都要进行测序,所以突变不是问题。谢谢!
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