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标题:【求助】胶原酶溶液如何配制

子衿青青[使用道具]
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【求助】胶原酶溶液如何配制


配制1mg/ml的胶原酶溶液是用pbs来配,还是用三蒸水配制,是否可用培养液来配啊
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66+77[使用道具]
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应该用PBS或Hanks来配,胶原酶发挥作用需要离子强度和合适PH值,光用三蒸水配不利于酶的活性,培养液也不太适合。还要将PH值调到7.4左右。
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dog002[使用道具]
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你可以根据你用胶原酶的目的来配置。如果你是用来消化组织的话你可以用pbs和培养液来配置。一般胶原酶比较合适的ph值在7.3-7.7都可以。浓度你可以配成0.025%,毕竟这是很贵的东东啊!
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veiwu[使用道具]
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好像文献上都是用的1mg/ml的胶原酶溶液阿,用0.025%的行吗?是不是消化时间要延长阿?
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jude[使用道具]
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0.1%~0.3%的胶原酶,0.025的浓度太低了。
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gmt[使用道具]
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可是我用来消化肝细胞效果却很好啊,我想着应该是没有什么问题的。当然树上的确是说的0.1-0.3mg/ml。那就看你用脚远没做什么啦。
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qianqin1977[使用道具]
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胶原酶应该用D-Hank氏液来配。
不能用三蒸水因为渗透压太低细胞不能耐受,也不能用培养液因为其中的成分复杂对消化有影响,最好也不用Hank氏液因为ca+Mg2+离子易与一些成分结合形成沉淀影响分离(但这是理论上,我曾经试过结果也还不错),PBS文献上没见过,但应该理论上可以用的。
另外常用浓度为0.1%~0.2%,当然还要看你做什么。
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JK.jon[使用道具]
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配制胶原酶首先要看你的目的是什么,其次要看消化的是什么组织。不同的组织需用不同的浓度,不同的浓度消化时间也不同。而且,每一批胶原酶很可能质量不完全一样,所以效果不稳定。胶原酶绝对不能用三蒸水配,渗透压不对,即使消化下来细胞,可能活力很差,不等贴壁就over了。PBS或培养液均可,我都用过。
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shenkunjie[使用道具]
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我用来分离干细胞的胶原酶的配制方法是:hepes缓冲液 200ml,胶原酶 0.05g,无水CaCl2 0.15g. hepes缓冲液ph:7.65 37度消化 。效果挺好的
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zhy平平[使用道具]
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如果是消化软骨,建议采用的浓度为0.2%,用D_Hanks 配。不知道,你消化的是透明软骨还是弹性软骨,或是纤维软骨?
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