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标题:[求助]关于realtimePCR条件如何摸索的问题

豆荚[使用道具]
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[求助]关于realtimePCR条件如何摸索的问题

[求助]关于realtimePCR条件如何摸索的问题[转载]


各位大虾!
最近一直在做realtime PCR, 由于是叫公司做,先期摸条件都是他们在弄,自己很少能参与进去,但等到分析结果时发现了很多问题,却又不知道该如何解决
问题一:
我需要跑好几个基因,但公司跑的时候都用一个条件,说是增加基因之间的可比性,而且都用两步法,即94℃2分钟预变性,然后93℃10秒, 60℃40秒共40个循环,,但这样跑出来的结果是有几个基因如GAPDH是好的,但有几个就不行,出峰都很迟,且阳性对照都做不出来,明显是不对的。和公司的技术人员联系,他们说这样做是有道理的,因为两步法可以保证TAQ酶的活性,使结果更灵敏,且他们认为只要标准品跑得好就说明条件是好的。
但我也问过其他人,有说是标本应该另行摸条件的,而且应该跟普通PCR一样用跑胶的方法摸好了再去跑。
现在我的问题是到底应该怎样来摸索realtime PCR的条件?

问题二:
除了PCR程序外,还有PCR体系问题,现在我的体系是40ul,其中dNTP 200pmol/ul,引物各0.600 pmol/ul,荧光探针0.25pmol/ul, Taq酶2 u, cDNA 模板4 ul,也就是探针每个反应用10pmol,引物用24pmol.其实这样做是很浪费引物和探针的,不知能否再优化一些?

问题三:
还有,我发现做realtimePCR反应不同锅之间的差距很大,是否应该让所有的TEST都在一个锅里做才行,在做目的基因的同时是否每锅都得同时跑GAPDH??

难过ing!!

各位高手千万给个解答啊 ~~~·
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豆荚[使用道具]
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我还有个问题,在设计探针荧光基团的时候是否都可以设计成为5‘端FAM,3’端BHQ1?
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清风风铃[使用道具]
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ask the company that synthsiye the primer for u.
and the first queation, i think u have receive my mail?
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微笑的海豚[使用道具]
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我们实验室GAPDH的Program:95度300s,95度20s,60度20s。
体系30ul,用的是Z-TAQ,Z-TAQ buffer(30nM Mgcl2)3ul, z-dNTP2.4ul,10pmoll/l的两种引物个2.5ul,primer2ul,z-taq 0,3ul, 水12.3ul,DNA or cDNA5ul.因为这是我们这里白血病的常规检查GAPDH,所以这个条件应该是很优化的。你可以试一下。
用Taqman系统通常都用2步法,这点不用置疑。另外,如果能把GAPDH的程序调的跟目的基因的程序一样当然好,样本不多时,一锅就可以出来,但是很多时候这样是行不通的。
如果你想重新作优化,重新定程序,能在real tiime上跑最好,但是很费试剂。最好是调整程序用普通PCR,优化体系用real time. 将样本稀释成不同指数级,一般是从10的0次方到10的4次方,选取反应效率在1左右的条件。
如果程序和体系的反应效率很好,应该是很稳定的,不同锅之间的差别不应该很大,同一样本的CT值相差最多1左右。
我可以把我手头的一些protocol发给你。另外设计探针,订货是我只写探针序列和5‘端FAM,剩下的告诉公司怎么好怎么做。
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楼上的大侠,可以将protocol发给我吗?我们正准备做定量pcr!
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coolcool[使用道具]
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楼上的大侠,可以将protocol发给我吗?我们正准备做定量pcr!
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不同意主任的看法; 意见如下。

1。 mg2+, realtime PCR 不应该小于5 mM (一下都是反应终浓度)
2。 dNTP 不小于400nM
3. primer 不小于400nM
4. probe 建议200nM

你的GAPDH每次都好, 是因为公司已经将她优化到极点
你的基因反应不好, 是因为1。 primer 没有设计好。2。 taqman探针没有设计好。

以上两个设计, 在Taqman-realtime PCR反应里息息相关, 不是1000-2000人民币能解决的

一个好的探针就要300US$, 你自己考虑一下, 那个公司收你多少, 他们能做多少
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@木木@[使用道具]
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韩梅梅:
请教一下,怎样来判断一个反应体系是否合理呢?是否一定要做到大量标本检测以后才能肯定体系的稳定性?我们的体系优化后,Mg2+的浓度是2.5mM,并不是大于4mM。
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微笑的海豚[使用道具]
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pinx,很长时间没有来了,protocol刚刚发给你了,希望不晚。
chiyue008:讨论:
我做了大量的PCR优化工作,主要是关于镁离子的,浓度从2到5.5mM,我的两种基因一种4.0下最优,一种4.4下最优。用的是质粒DNA从10的0次方到10的4次方,两个平行管,做9次,优化标准:扩增效率在0.98以上,R2在0.99以上。用taqman一般都需要做优化PCR这一步。
关于其他成分的浓度,刚开始我也是按照公司或其他资料建议的浓度,但是结果不稳定,后来同事建议我用一个现成的protocol,先优化Mg,如果有问题再调整。
我现在的两种基因都不符合你说的,但是反应很好,质粒DNA的标准曲线扩增效率为0。98和0。99,R2在0。995以上。
zynhy:建议先用质粒DNA做,系统稳定后再作标本,不然会很浪费的。
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微笑的海豚[使用道具]
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将我的protocol写上:

1. length:64bp
PCR BUFFER 10* (5mM Mgcl2) 3ul
Mgcl2 25mM 3,5ul
dNTP 25mM 0,35ul
sense primer 10pmol/ul 2,5ul
antisense primer 10pmol/ul 2,5ul
probe 10pmol/ul 2ul
hotstar 0,25ul
water up to 20ul
cDNA or DNA 10ul
2. length:94bp
PCR BUFFER *10 15mM Mgcl2 3ul
Mgcl2 25mM 3ul
dNTP 25mM 0,35ul
sense primer 10pmol/ul 2,5ul
antisense primer 10pmol/ul 2,5ul
probe 10pmol/ul 2ul
普通Taq(Roche ) 0,25ul
water up to 20ul
cDNA or DNA 10ul
Program: 95oc 600s
94oc 15s
62oc 60s
40cycles
我的内参用的是ABL,protocol与1。一样,program也一样。
事实上,除了镁离子之外,到现在我也没有算过其他成分的终浓度,但是体系很好很稳定,可能是我的幸运之处。
近两个多月,我一直在做RT-PCR系统优化,这个工作真是很痛苦,跑了都有上百遍realtime PCR了。而且当系统扩增不好时,有时自己也不知道是哪里出了问题。体会最深的:1.镁离子的优化,当从2mM做到5.5mM时,可以很明显看到扩增效率从低到高再到低的过程。但是工作量很大。
2. Taq 酶,没有任何一种taq适用于全部。我的l两个体系刚开始都用hotstar,结果一个体系怎么优化扩增效率只有0.7左右,换了taq后,扩增效率一下提高到0.95以上。
3. 退火温度: 两种基因taqman系统我从56做到64度,有点失之毫厘谬以千里的感觉,温度相差一两度,扩增效率可以有天壤之别。
4.对于引物和探针,两个引物只要能扩增出目的基因就算是符合基本要求了。事实上我的两个引物设计不是太好,Tm相差有点大,在Taqman系统没有太大麻烦,但是在SYBRGREEN系统中寻找退火温度时遇到不少困难,但是只要有耐心,是可以找到最优的体系的。
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