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标题:SYBR Green PCR

楚留臭[使用道具]
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1
 

SYBR Green PCR

SYBR Green PCR [转载]


前段时间订购回了SYBR Green 试剂,再进行实验发现阴性对照有扩增,
于是换了反应管,tip,灭菌水,重新稀释引物,但结果依然。我把体系
列再下面,请大家帮我分析以下原因。我本打算重新设计引物了。

1.conventional-PCR:
反应体系:ddH2O 12.2微升
10*Buffer 2.5微升
2.5mMdNTP 2微升
25mM Mg+ 4微升
10微mol Primer各1.8微升
Taq酶 0.2微升
模板 0.5微升
total:25微升
反应条件:95度5分钟,
95度 20秒,55度 20秒,72度 30秒,40个循环


2.SYBR Green PCR:
反应体系:Master Mix:12.5微升
RNase-Free H2O:7.9微升
模板:0.5微升
10微mol Primer各1.8微升
UNG:0.5微升
total:25微升
反应条件:50度2分钟,95度15分钟,
95度20秒,55度20秒,72度30秒,40个循环

扩增子均为63bp,Mg+4mM,引物0.6pmol,模板(原液180ng/微升)
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楚留臭[使用道具]
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2
 
由于此次购置之前,一直结果很稳定,但试剂是promega的,也应没问题才对吧 ?
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喵咪[使用道具]
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3
 
这样看来还是污染的可能性大,把整个体系全换新的,再试试看。注意不要有环境的污染。
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楚留臭[使用道具]
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4
 
谢谢主任!
我在的实验室主要不是做科研的实验室,经常会检测一些转基因产品或抗生素残留以及动物组织成分检测,都是用试剂盒检测。
那我在更换体系后要注意防止污染了!有点头痛!
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+田田+[使用道具]
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5
 
看来你要做好换引物的准备了。
先试一试将体系的Mg++,或引物浓度降低。扩增圈数减少。
若不行,换引物。
注意:新引物一定要避免形成引物二聚体。
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楚留臭[使用道具]
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6
 
多谢各位了,
上次设计引物用的是primer express,按其中的taqman探针引物一栏设计的(没有单独的SYBR Green PCR引物设计一栏),选择了得分最高的一对引物后先进行了conventional PCR 调整了Mg++,和引物浓度,以及循环次数从35--40,(其依据是条带的明亮度最亮和二聚体带最不明显),
再以此条件进行SYBR Green PCR,前一个试剂是ABI的,酶,UNG,Mg++,dNTP都是分装的,后来酶没了,没有购来合适的,就改定了Qiagen的试剂盒,上面提到扩增子最好大于150。其中的Master Mix合成了以上几项,但未含有UNG,为防污染,我将前一试剂盒的UNG利用上,做了未用UNG的对照,结果阴性对照扩增仍同阳性。
我想用Oligo设计一对引物,扩增子在100以上。
谢谢lizt的建议,我马上去试一下,
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阿福[使用道具]
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7
 
用熔解曲线可以区分非特异性扩增,ABI的仪器如5700、7000等都有这个功能,不知道你用过没有。用SYBR做实验,好像阴性对照有增长,因为SYBR是非特异的,如果你看一下它的解链曲线的话,就会发现阴性对照的曲线的高峰的温度在80度以下。如果是阳性的话,它的解链温度应该至少在80度以上。
运行仪器前点击Disosiation即可。
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楚留臭[使用道具]
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8
 
我用的是7700的机型,到ABI的网页上下载了一个dissociation curve 的软件,
primer1的Tm是58,primer2的Tm是59,Amplicon的Tm是84,
阴性对照的溶解只有一个峰值78.8左右。阳性的峰值也差不多(Qiagen)
以前用ABI的试剂,同样的引物和反应条件,阴性对照的峰值76,阳性80。
我想弄一张图片上来,可是Mac上的图片,不知如何转化到windows,我再试!
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冰激凌小姐[使用道具]
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9
 
l楼上的SYBR® Green I是在那里买的,我也想买一个,价钱如何?  
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楚留臭[使用道具]
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10
 
ABI 仪器买时自带了一个SYBR Green PCR Core Reagents 试剂盒
后来买的是在基因公司购买的:
货名:Quanti Test SYBR Green PCR Kit 规格:200rxns 货号: 204143
产地:Qiagen 价格:5822RMB
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