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标题:【求助】流式细胞术问题

windboy[使用道具]
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【求助】流式细胞术问题


请问哪位知道,做流式细胞术检测时,到上流式细胞仪分析之前的步骤是什么,怎么做、需要什么试剂之类的
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QUOTE:
原帖由 windboy 于 2015-12-12 21:05 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '%s')

请问哪位知道,做流式细胞术检测时,到上流式细胞仪分析之前的步骤是什么,怎么做、需要什么试剂之类的

你是用流式分析什么,如果是做凋亡的话我可以给你发个步骤。
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windboy[使用道具]
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我是要分析人胚肺二倍体成纤维细胞。
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不知道你是做凋亡呢
还是表面标记
还是胞内因子
给你Protocol参考下
表面分子标记是鉴定DC成熟程度和发挥细胞免疫功能的重要指标,本实验采用流式细胞的方法在DC培养成熟前后鉴定DC的表面分子标记,包括:HLA-DR、CD1α、CD80、CD83 、CD86;
二、试剂、材料和方法
1.试剂
1.1流式试剂
检测抗体:
HLA-DR -FITC,BD公司Cat No:555811;
CD1α-PE,BD公司Cat No:555807;
CD80- PE-CY5,BD公司Cat No:555682;
CD83 -PE,BD公司Cat No:556855;
CD86 -FITC,BD公司Cat No:555657;
同型对照抗体:Mouse –FITC ,BD公司Cat No:555748、Mouse -PE,BD公司Cat No:555749、Mouse - Mouse - PE-CY5,BD公司Cat No:555750。
1.2 其它试剂
完全RPMI 1640(Hyclone),添加10%经热灭活的胎牛血清(FBS,Hyclone)含青霉素100U(Sigma),链霉素100μg /ml(Sigma);1xPBS经过高压灭菌;细胞洗涤buffer:含2%FBS的PBS,4℃储存;0.02%EDTA的PBS。
2.材料
12×75mm 6ml的Falcon管(BD Ca No.352052);15、50ml的聚丙烯管(Falon);5ml锥形12×75mm锥形聚苯乙烯管(VWR);5°斜面培养架;10µL枪头、200µL枪头、1ml枪头、1.5ml离心管、15 ml离心管适量。
3.仪器
37℃孵箱5%CO2、混匀振荡器、离心机、加样枪、BD FACS流式细胞仪。
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三.  实验方法
1.  细胞的收集、准备
分别在分离培养黏附获得单核细胞时即培养D0天和DC刺激成熟后D10或者D12天收集细胞,收集入离心管以1000RPM/mins离心10mins沉淀细胞,弃上清,加入3~4ml预冷的PBS(含2%FBS),振荡混匀,离心沉淀;弃上清,每管加入1ml PBS(含0.02%EDTA),振荡分散细胞团后37℃孵育细胞悬液15mins,将细胞团充分分散;加预冷的PBS(含2%FBS)洗涤,混合后1000RPM/mins离心10mins,弃上清,留下约300μl溶液,轻轻拍散细胞,计数并调整细胞浓度至2×106cells/ml,分为50μl /管,共6管细胞悬液编号备用。该步骤计数时需要用台盼蓝染色检测细胞活力是否达到90%,否则死细胞会非特异地结合到抗体上的影响检测结果。
2.  流式检测步骤
DC成熟表面分子流式检测
分为两管,采用多标记染色进行检测。
1号检测管:检测HLA-DR、CD1α和CD80分子,分别在D0天和D10天收集细胞并调整至上述细胞浓度和体积后,取细胞悬液管加入流式单克隆抗体,同时加入HLA-DR -FITC,CD1α-PE和CD80- PE-CY5的流式单克隆抗体,4℃避光孵育30mins,用1ml的PBS溶液离心洗涤两次,加入2%多聚甲醛100μl重悬细胞并固定20分钟; 4号对照管:同时设置PE、FITC和PE-CY5标记的抗鼠IgG作为流式的同型阴性对照,上述细胞悬液同时加入同型对照抗体10μl,处理方法同前,流式细胞仪检测;
2号检测管:检测CD83和CD86分子,分别在D0天和D10天收集细胞并调整至上述细胞浓度和体积后,取细胞悬液管加入流式单克隆抗体,同时加入CD83 –PE和CD86 –FITC,4℃避光孵育30mins,用1ml的PBS溶液离心洗涤两次,加入2%多聚甲醛100μl重悬细胞并固定20分钟; 6号对照管:同时设置PE、FITC标记的抗鼠IgG作为流式的同型阴性对照,上述细胞悬液同时加入同型对照抗体10μl,处理方法同前,流式细胞仪检测.
四、结果表示
以表面分子阳性百分比(%),即含上述各表面分子阳性细胞所占细胞总数的百分数来表示。
五、附BD FACSA流式细胞仪检测操作规范
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再给你流式细胞仪的使用方法参考
流式细胞仪的使用程序
一.开机程序
1.  检查稳压器电源,打开电源,稳定5分钟。
2.  打开储液箱,倒掉废液, 并在废液桶中加入400ml漂白水原液。打开压力阀,取出鞘液桶,将鞘液桶加至4/5满(一般可用三蒸水,做分选必须用PBS或FACSFlow),合上压力阀。确实盖紧桶盖,检查所有管路是否妥善安置。
3.  将FACSCalibur开关打开,此时仪器功能控制钮的显示应是STANDBY,预热5-10分钟。排出过滤器内的气泡。
4.  如果需要打印,打开打印机电源。
5.  打开电脑,等待屏幕显示出标准的苹果标志。
6.  执行仪器PRIME功能一次,以排除Flow cell中的气泡。
7.  分析样品时,先用FACAFlow 或PBS进行HIGH RUN约2分钟。
。做过分选后,每次开机后需冲洗管道:向分选装置上装上两个50ml离心管,不接通浓缩系统,摁下右下角白色按钮开始冲洗。待自动停止后接通浓缩装置,同上法冲洗一次。
二.  预设获取模式文件(Acquisition Template Files)
1.  从苹果标志中选择CELLQuest见一个新视窗,可利用此视窗编辑一个获取模式文件。
2.  选取屏幕左列绘图工具中的Dot plot,绘出一个或多个Dot Plots(点图)。从Dot Plot对话框中选取Acquisition作为图形资料来源,并确定适当的x轴和y轴参数。
3.  选取屏幕左列绘图工具中的Histogram,同上法可绘出Histogram(直方图)。
4.  将此视窗命名后储存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest Folder \EXP文件夹中,下次进行相同实验时可直接调用。
. 本计算机中已设定两个模式文件:ACQ和EXP,储存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest \EXP文件夹中,ACQ用于细胞DNA检测,EXP用于细胞表面标志分析。
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三.  用CELLQuest进行仪器的设定和调整
1.  从苹果画面中选取CELLQuest,进入CELLQuest后在File指令栏中打开合适的获取模式文件。
2.  从屏幕上方Acquire指令栏中,选取Connect to Cytometer(快捷键: +B)进行电脑和仪器的连机。将出现的Acquisiton Control对话框移至合适位置。
3.  从Cytometer指令栏中,开启Detectors/Amps、Threshold、Compensation、Status等四个对话框,并将它们移至屏幕右方,以便获取数据时随时调整获取条件。也可以用 +1,2,3,4获得此四个对话框。
4.  在Detectors/Amps对话框中,先为每个参数选择适当的倍增模式(amplifier mode):线性模式Lin或对数模式Log。一般进行细胞表面抗原分析如分析外周血的淋巴细胞亚群时,FSC和SSC多以线性模式Lin测量,且DDM Param选择FL2,而FL1, FL2与FL3则以对数模式Log测量;分析细胞DNA含量时,FSC,SSC,FL1,FL2,FL3皆以Lin进行测量,且DDM Param选择FL2;分析血小板表型时,FSC,SSC,FL1,FL2,FL3等均以Log进行测量。
5.  放上待检测的样品,将流式细胞仪设定于RUN,流速可在HIGH 或LOW上。
6.  在Acquisiton Control对话框中,选取Acquire,开始获取细胞。在以下的仪器调整过程中随时选取Pause,Restart以观察调整效果。未完全调整好之前不要去掉SETUP前的“”。
7.  在Detectors/Amps对话框中,调整FSC和SSC探测器中的信号倍增度:PMT voltages(粗调)与Amp Gains(细调),使样品信号出现在FSC-SSC点图内,且三群细胞合理分布。
8.  在Threshold 对话框中选择适当的参数设定Threshold,并调整Threshold的高低,以减少噪音信号(细胞碎片)。一般做细胞表型时用FSC-H而做DNA时用FL2-H。Threshold并不影响检测器对信号的获取,但可改善画面质量。
9.  从屏幕左列绘图工具中选取Region(区域),并在靶细胞周围设定区域线,即通常所说的门。圈定合适的细胞群可使仪器调整更为容易。
10.  在Detectors/Amps对话框中,调整荧光检测器(FL1, FL2, FL3, FL4等)的倍增程度。根据所用的荧光阴性对照样品调整细胞群,使之分布在正确的区域内。
11.  在Compensation对话框中,根据所用的调补偿用标准荧光样品调整双色(或多色)荧光染色所需的荧光补偿。比如应该为FL1+ FL2- 的细胞群却分布在FL1+ FL2+区域内,则需调大FL2-?%FL1中的“?”,并从FL1-FL2点图中观察新的调整是否恰当
12.  在Status对话框中可见:Laser Power:正常值—Run/Ready为14.7mW,Standby为5mW;Laser current:正常值为6Amps左右。
13.  调整好的仪器设定可在Instrument Settings对话框中储存,下次进行相同实验时可调出使用,届时只需微调即可。
. 本计算机中已有三个名叫储存于FACStation G3 \BD Applications \CELLQuest Folder \IMM-InstrSettings及FACStation G3 \BD Files \Instrument Settings Files \CalibFile和Mast-Cell-Set的参数文件,前二者可用于分析人白细胞,后者用于分析小鼠肥大细胞。
四.  通过预设的获取模式文件进行样品分析
1.  从苹果标志中选择CELLQUEST,新视窗出现后从File指令栏中选择Open,打开预设的获取模式文件。
2.  从屏幕上方Acquire指令栏中,选取Connect to Cytometer进行电脑和仪器的连机。将出现的Acquisiton Control对话框移至合适位置。
3.  从Cytometer指令栏中选取Instrument Settings,在其对话框中选择Open以调出以前存储的相同实验的仪器设定,按Set 确定。
4.  在Acquire指令栏中,选择Acquisition&Storage决定储存的细胞数,参数,信号道数。其中Resolution在做细胞表面标志时选择256,做DNA时选择1024。Parameter Saved…则根据不同的检测对象选择不同的参数。
5.  在Acquire指令栏中,选择Parameter Description,以决定文件存储位置(folder),文件名称(file),样品代号以及各种参数的标记(panel),即安排tube1,2,3…的检测参数。一般本仪器获取的数据按照检测对象的不同分别储存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest \IMM 和DNA 文件夹中。文件根据日期命名。
6.  在Cytometer指令栏中,选择Counters,将此对话框移至合适位置,以便于随时观察events计数。
7.  将样品试管放至检测区,在Acquire Control对话框中选取Acquire以启动样品分析测定。
8.  微调仪器设定,待细胞群分布合适后选择Acquire Control对话框中Pause, Abort, 去除Setup前的“”,开始正式获取信号,存储数据。
9.  当一定数目的细胞被测定后,获取会自动停止,并会自动存储数据。重复步骤7,继续分析下一个样品,直到所有的样品数据分析完毕。
. 当所有样品分析分析完毕,即换上三蒸水,并将流式细胞仪置于“STANDBY”状态,以保护激光管。
五.  关机程序:
1.  从File中选择Quit, 退出软件,选择Don’t Save至苹果屏幕。
2.  用4ml 1:10稀释的漂白水作样品,将样品置于旁位(vacuum is on),以外管吸去约2ml,在将样品架置于中位(vacuum is off),再HIGH RUN 5分钟(内管吸去2ml)。
3.  改用三蒸水4ml作样品,同上处理。
4.  按Prime三次。
5.  此时仪器自动转为STANDBY状态,换2ml三蒸水。必须在仪器处于“STANDBY”状态 10分钟后再依次关掉计算机、打印机、主机、稳压电源,以延长激光管寿命,并确保应用软件的正常运行。
6.  填写使用登记表。
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忘了说,主要是分析细胞周期
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流式检测细胞周期最常用的方法是PI染色法。
这种方法比较常规,网上搜一下应该有很多资料的。
1、制备单细胞悬液。
2、70%乙醇固定。
3、加RNA酶去除RNA的干扰。
4、标记PI染料。
5、流式上样分析。
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duoduo[使用道具]
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相关疾病:
白血病

再给你流式细胞仪的使用方法参考
流式细胞仪的使用程序
一.开机程序
………………”
您好, 想请教一下avivaqqqq大侠,和各位大侠,
请问一下我们实验室的流式细胞仪是Beckman ,型号 EpicsXL /XL-MCL,主要做白血病免疫分型。
我自己的实验要做的流式标本在机子上检测不出来荧光,不知道为什么。
系统第一、四通道荧光分别是FITC,PC-5,
我用的荧光染料是FITC和PerCP,双染的标本在机器上跟阴性标本是一样的。
非常郁闷。
请各位指点,多谢!
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