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标题:[精华]酶切问题讨论专栏

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[精华]酶切问题讨论专栏

[精华]酶切问题讨论专栏    [转载]


如何选择酶切缓冲液,如何提高酶切效率,尤其是PCR产物的酶切、双酶切、特殊酶切,总结了以下几点,希望对大家有帮助,欢迎补充!

1.PCR产物的酶切。
PCR产物的酶切与引物上引入的保护碱基有很大的关系,所以设计引物的时候就应该注意到这一点,如何选择保护碱基,具体参见NEB网站上关于保护碱基的资料:

PCR产物的酶切相关的帖子:
cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/actions/archive/post/242899_1.html')

cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/thread/818980')

cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/thread/620693')

cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/thread/720799')

2.加了保护碱基可能也会遇到切不动的问题,切不动可以从以下方面考虑:
(1)酶切缓冲液。每种酶都有公司提供的最佳缓冲液,它们的差别只是离子浓度与体系的不同,如Na、k、Mg等,还有PH值及缓冲体系(一般Tris-HCl),另外酶加甘油和DTT作为保护剂。在双酶切的时候常会遇到两种酶有各自的缓冲液,要达到高酶切效率,选择是个问题,如果酶切时间和量足够,解决的方法:
(A)使用其中一个酶的缓冲液,但要考虑到另一酶的反应效率,反应效率如何,可以查查酶在不同buffer里的效率参数,具体见公司网站,如NEB提供了很好的buffer参数:
cuturl('http://circuit.neb.com/neb/tech/tech_resource/restriction/buffers/buffer_chart.html')。
(B)使用它们的通用的缓冲液,使两种酶在同一缓冲液里达到也足够的酶切效率;没有通用的BUFFER怎么办呢? 分两次酶切。即先用一种酶切,胶回收后再用另一种酶切。一般先低盐后高盐,这种方法保证了在各自的酶切缓冲液中都得到最大的酶切效率,但缺点是要回收,损失大 ;
(C)克隆到T载体中,值得推荐的方法,克隆到T载体中,不须要考虑受这个条件的限制,酶切位点也可以用T载体上自带的。

(2)酶切温度。酶切温度也很重要,一般的酶切最适温度为37度,有些特殊的酶的反应温度不同,如Sma Ⅰ为30度。双酶切时这种情况下最好分开切,先低温后高温。

(3)酶切时间。酶切时间直接影响到酶切是否完全,一般为1-3h,这个时间已经足够,对于一些活性较好的酶,30min就可以酶切完全,建议在酶切1h后取5ul跑电泳以鉴定酶切效率;PCR产物的酶切时间较长,一般过夜。

(4)酶失活。如果使用酶解冻后放置太久,可能导致酶失活。这种情况较少见,只能换新酶。如果拿了不同公司的酶,buffer也不一样,怎么办?放心,可以用不同公司的酶进行双酶切,一般不会有问题的。可以先查查NEB的酶在不同缓冲液中的活性百分比,选择它们都有适中活性的buffer,每个公司生产的酶反应缓冲液针对特定内切酶是最合适的!

(5)酶切体系。选用多大的酶切体系取决于你的样品浓度,在双酶切的时候为了得到质量高的电泳图,尤其插入的是小片段DNA,酶切后产物量较少,可以增加酶切重组DNA的量和增加上样量,建议酶切前测定一下DNA浓度或跑电泳看看DNA有多浓,做到心中有数。

相关帖子
cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/thread/886961')

cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/thread/458396')

cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/thread/893847')

关于保护碱基的资料:

Cleavage Close to the End of DNA Fragment1.doc (104.5k)
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+田田+[使用道具]
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请问前辈:为什么双酶切时要先切低温再切高温?
如果酶切过夜会影响酶切效果吗?
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coolcool[使用道具]
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主要是考虑到酶活性的维持。
温度对酶的活性影响很大,温度高,容易造成某些酶的失活;双酶切时,由于有2种的限制酶存在,2种酶可能有不同的最适反应温点,当1种酶在其最适温点反应时,为了不使另1 种酶降解或失活,所以双酶切时要先切低温再切高温。
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seven7[使用道具]
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请问PCR产物酶切过夜,对连接没影响吗?
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紧急求助!万分感谢!!!构建vector 3个月没结果!
我的载体是PstI单酶切,脱磷。目的片段是PCR产物切胶回收PstI单酶切(切2.5h,引物设计加6个保护碱基),,然后又切胶回收,再连接,阴性对照长一些兰斑(可能脱磷不彻底),但样品只长几个白斑,鉴定全是假的。请问高手问题出在哪?是不是目的片段没切动导致没连上?载体是pCAMBIA1300, 目的片段9.7kb。
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koook5695[使用道具]
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你的目的片段9.7kb,有点大, 胶连有点困难了.可以考虑液连.用Agrose酶把你的胶溶解.并提高目的片段的纯度和浓度.

还有就是你的PCR产物PstI单酶切的问题,因为你跑胶看不出酶切的效果.可用一有PstI酶切位点的环质做对照一起酶切,可以看出部分问题.

你的载体脱磷也确实是个麻烦,每次做阴性对照也很对,但脱磷的程度要看你自己的掌握了,脱磷不彻底和太过了也不好.不过,CIP一定要保证活性.最好用

新的.
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applebook=213[使用道具]
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我个人认为,一般不到万不得已,没必要先回收再酶切,损失太大,绝大多数双酶切可在1×通用buffer中先切1小时,再在2×通用buffer中切1小时,可解决绝大多数酶切问题。
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applebook=213[使用道具]
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我个人认为,一般不到万不得已,没必要先回收再酶切,损失太大,绝大多数双酶切可在1×通用buffer中先切1小时,再在2×通用buffer中切1小时,可解决绝大多数酶切问题。
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applebook=213[使用道具]
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不过先回收,也能保证酶切的效率,如果PCR的产物量满意的话,回收的损失可以忽略不计。毕竟酶切的效率对于克隆化相对更重要一些。  
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荷塘青蛙![使用道具]
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过去,早期的内切酶有星活性,过度酶切能给产物切的七零八落,现在好像已经没有这个问题了,早些年曾经遇到过把产物切碎了的情况。  
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