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标题:[求助]限制性酶切

duoduo[使用道具]
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[求助]限制性酶切

[求助]限制性酶切


求助:
我这几天进行VDR限制性酶切反应(TaqI、ApaI两种酶),反应体系为15微升。其中PCR产物4微克,两种酶都是10U,10*Buffer为1.5,DDW补足,可是切了一个晚上却没有切下来(水浴温度正确,分别为65和37度), 是什么原因阿?我见说明书一般都是50微升体系,是不是我应该用50微升体系(其它成分不变,仅用灭菌双蒸水DDW补足)?
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幽兰君[使用道具]
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体系不是问题,若你15微升体系能看见带,切不出来就是切不出来。放大也没用。我的分析可能原因如下:
1,DNA不纯,可考虑纯化一次。
2,双酶切体系有没问题,请自觉查看一遍,这是做实验的基本原则。
祝好运!

正在申请中级,望大家多多支持!谢谢各位战友!!!
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欢迎大家参加细胞信号转导讨论区!加入我们的未来之星!!!
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庄梦蝶[使用道具]
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3
 
1.不知道所用的两种酶,有没有问题,有时污染或是存放时间过长,会导致酶活力丧失。
2.PCR反应导致酶切位点碱基变化。
3.PCR产物是否经过回收步骤,如果没有可考虑DNA精制一下。  
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嘉年华[使用道具]
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体系应该没问题,可能酶活性下降。电泳后有条带吗?
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duoduo[使用道具]
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我的pcr 扩增出来的条带本身就很弱(我是用chelex100提取的DNA,上清已转移出来,冰箱4度保存有4个月了,25微升体系我加了6微升chelex提取的DNA,条带还是很弱)。酶切后(40微升体系加入8微升pcr产物,酶10U,10*Buffer用了3微升,余用灭菌水补足)竟然条带更弱了,ApaI酶切就什么都没有,TaqI酶切的也很弱,几乎不敢确认,Markar带很好。
请问:1、我该怎样才能使我的PCR扩增产物条带变强啊?
2、酶切该如何优化阿?
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#甜#[使用道具]
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首先你的DNA保存问题:一般放于-20度保存,为什么要放于4度呢,而且那么长时间。
产物量多量少不仅跟模板量有关,(你测模板OD值了吗,你应该知道你在体系中加了多少ug的DNA)还跟模板质量、循环数、退火温度、你目的基因的丰度等有关。
如果你的条带很特异,没有smea,即使条带很弱,那还是有办法提高产量的,那就是第二次PCR,将你第一次产物百倍或千倍稀释,取一微升作模板,其它条件与你第一次PCR一样,再括一次,应该会提高产量的。
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泉水叮咚[使用道具]
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DNA片段有多大?如果片段比较短的话经过电泳跑出来也是模糊的。
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duoduo[使用道具]
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8
 
我已经放到4度了,这是我的错误。我测过我的chelex提取的DNA浓度(20纳克/微升,检材为血痕纸片),我用酚-氯仿提取的DNA调试的扩增条件(结果用chelex提取的DNA就是扩不出来,我将Mg浓度调到1.1mM才扩增出来,但是很不稳定,条带很弱,25微升体系中加入6微升DNA还是那样。)我的一次PCR扩增产物浓度为500纳克/微升,我进行二次pcr却扩不出产物来(体系条件和一次扩增一样,只是25微升体系加入2微升一次扩增产物),这是什么原因阿?另外我的PCR扩增片段是501bp,酶切后的片段均是200多bp。我用的是生工的普通Taq酶。我做了一些对比试验,原因就是出在我的chelex提取的DNA问题上了,重新提取是不可能了,现在我想解决的问题是如何处理一下我的chelexDNA,能使它和酚氯仿提取的DNA一样扩增出带来?
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米米[使用道具]
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除了上述问题外,我想问一下,你设计带有酶切位点的引物是否带了足够、合适的保护碱基,若无保护碱基,是难以切动的
不同酶切位点的保护碱基数目和类型不同,你可以登陆下面的网站查询一下
cuturl('www.neb-china.com')
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阿拉蕾[使用道具]
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10
 
介绍一种方法:

1.PCR做完后仅仅只有一条非常特异的条带吗?况且还有很弱的扩增条带电泳时看不出来,我建议你用胶回收特异条带。担心DNA量不够?不要紧,多扩几管同时进行,回收在一个柱上。

2.酶切反应前先要将PCR回收产物定量,这点非常重要。一般20ul体系10U酶切目的基因的量不应该超过1ug,超过了酶切比较困难。体系不宜放大,比如20ul体系的放至50甚至100酶切效果不是太好。所以建议就做20ul体系,跟PCR一样多做几管。有点笨,但是非常实用。

3.从你做试验的情况来看,好像每次不是特别稳定?这点非常重要,尽量保证每次实验的稳定性和重复性。

4.在确定以上几个问题都很好解决的前题下,如果还是切不开,考虑换其他公司的酶。从我们的经验来看,NEB、罗氏 、Promega都不错。当然,这只是个人意见。
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