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标题:[求助]谁能告诉我rt-pcr的过程?

功夫张CJ[使用道具]
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[求助]谁能告诉我rt-pcr的过程?

[求助]谁能告诉我rt-pcr的过程?


来国外有板有3个月了,研究员突然问我过成,我没做过实验,什么都不知道,我想知道这个过程,最好有动画什么的,个种酶的浓度,都起什么做用,谢谢,能快点回复最好了!
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箭头儿[使用道具]
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那不是很简单的吗?RT就是反转录了,在反转录酶的作用下把RNA反转录成
cDNA,再取cDNA做PCR就是了。
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箭头儿[使用道具]
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那不是很简单的吗?RT就是反转录了,在反转录酶的作用下把RNA反转录成
cDNA,再取cDNA做PCR就是了。
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鲁西西[使用道具]
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refer to the URL and you may find it useful to your research,
particularly when you use PCR frequently for cloning, genotyping,
characterization, etc.
cuturl('http://www.pcrlinks.com/index.html')
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建议看分子克隆(第三版),有很详细的介绍啊!
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是在上册936页
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椰子叶子[使用道具]
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不好意思,本来很好的一篇文章,我又不知道怎么传上去,你就先凑合看一下,感觉好的话我用邮箱给你传过去
第一章 PCR和RT-PCR基础
PCR基础
聚合酶链式反应(PCR)过程利用模板变性,引物退火和引物延长的多个循环来扩增DNA序列。这是一个指数增长的过程,因为上一轮的扩增产物又作为下一轮扩增的模板,使其成为检测核酸的一种非常灵敏的技术。一般,经过20-30个循环得到的扩增产物就足够在溴化乙锭染色的凝胶上观察到。反应包括几个成分(表1)。模板可以为纯化的基因组或质粒DNA;由RNA转化得到的cDNA;或未经纯化的粗制生物样品,如细菌克隆或噬菌斑。引物确定了扩增产物的序列和长度。最常用的热稳定聚合酶是Taq DNA聚合酶。这种酶适用于常规扩增,但是使用其他热稳定聚合酶会改善结果。扩增反应还包括缓冲液,三磷酸脱氧核苷及镁离子。镁离子浓度影响酶的活性、引物退火、模板和PCR产物的熔点(Tm),忠实性以及引物二聚体的形成等。在随后的章节中将讨论这些成分、循环参数以及其他参与作用的因子相互间各种作用对于成功PCR的影响。
表1. 反应成分

Component  Final Concentration
Template  10^4-10^6 copies of DNA template
Primer 1  0.1-0.5µM
Primer 2  0.1-0.5µM
10X Reaction buffer  1X
Magnesium  1.0-3.0mM
dNTP mix  200 mM each dNTP
Thermostable DNA polymerase  1-4 units/100 ml reaction

RT-PCR基础
RT-PCR将以RNA为模板的cDNA合成同PCR结合在一起,提供了一种分析基因表达的快速灵敏的方法。RT-PCR用于对表达信息进行检测或定量。另外,这项技术还可以用来检测基因表达差异或不必构建cDNA文库克隆cDNA。RT-PCR比其他包括Northern印迹、RNase保护分析、原位杂交及S1核酸酶分析在内的RNA分析技术,更灵敏,更易于操作。
RT-PCR的模板可以为总RNA或poly(A)+选择性RNA。逆转录反应可以使用逆转录酶,以随机引物、oligo(dT)或基因特异性的引物(GSP)起始。RT-PCR可以一步法或两步法的形式进行。在两步法RT-PCR中,每一步都在最佳条件下进行。cDNA的合成首先在逆转录缓冲液中进行,然后取出1/10的反应产物进行PCR。在一步法RT-PCR中,逆转录和PCR在同时为逆转录和PCR优化的条件下,在一只管中顺次进行。
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椰子叶子[使用道具]
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图1. RT-PCR概图
这本指南阐述了成功RT-PCR和PCR的关键。高灵敏性(从小量样品中得到足量结果)和高特异性(选择性地仅得到所需的产物)是成功PCR的标志。可以通过仔细的实验设计(如选择恰当的酶,设计最理想的引物,使用不同的缓冲液和添加剂,确定循环参数及制备高质量的模板等)以获得最佳的RT-PCR和PCR。

第二章 增加RT-PCR灵敏度
分离高质量RNA
成功的cDNA合成来自高质量的RNA。高质量的RNA至少应保证全长并且不含逆转录酶的抑制剂,如EDTA或SDS。RNA的质量决定了你能够转录到cDNA上的序列信息量的最大值。一般的RNA纯化方法是使用异硫氰酸胍/酸性酚的一步法。Trizol试剂法(见下图)将一步法加以提高,可以从多种组织和细胞中提取高质量的非降解RNA。Trizol试剂法可以从最少100个细胞或1mg组织中提取RNA。
TRIzol®试剂步骤略图


一般不必使用oligo(dT)选择性分离poly(A)+RNA。不管起始模板是总RNA还是poly(A)+ RNA,都可以检测到扩增结果(图2)。另外,分离poly(A)+ RNA会导致样品间mRNA丰度的波动变化,从而使信息的检出和定量产生偏差。然而,当分析稀有mRNA时,poly(A)+ RNA会增加检测的灵敏度。

图2. 总RNA和poly(A)+ RNA在RT-PCR中的比较
以5或1μg Hela细胞总RNA(分别为泳道1和2)或500ng和50ng Hela细胞poly(A)+ RNA(分别为泳道3和4)。使用oligo(dT)引物和SuperScriptⅡ逆转录酶合成cDNA。扩增对象为DNA聚合酶εmRNA 5'端377bp片段和复制酶A mRNA的643bp片段,两者都为中等丰度。将1/10的cDNA合成反应产物使用Taq DNA聚合酶扩增30个循环。

为了防止痕量RNase的污染,从富含RNase的样品(如胰脏)中分离到的RNA需要贮存在甲醛中以保存高质量的RNA,对于长期贮存更是如此。从大鼠肝脏中提取的RNA,在水中贮存一个星期就基本降解了,而从大鼠脾脏中提取的RNA,在水中保存3年仍保持稳定。另外,长度大于4kb的转录本对于痕量RNase的降解比小转录本更敏感。为了增加贮存RNA样品的稳定性,可以将RNA溶解在去离子的甲酰胺中,存于-70℃。用于保存RNA的甲酰胺一定不能含有降解RNA的杂物。来源于胰脏的RNA至少可以在甲酰胺中保存一年。当准备使用RNA时,可以使用下列方法沉淀RNA:加入NaCl至0.2M及4倍体积的乙醇,室温放置3-5分钟,10,000×g离心5分钟。
在逆转录反应中经常加入RNase抑制剂以增加cDNA合成的长度和产量。RNase抑制剂要在第一链合成反应中,在缓冲液和还原剂(如DTT)存在的条件下加入,因为cDNA合成前的过程会使抑制剂变性,从而释放结合的可以降解RNA的RNase。蛋白RNase抑制剂仅防止RNase A,B,C对RNA的降解,并不能防止皮肤上的RNase,因此尽管使用了这些抑制剂,也要小心不要从手指上引入RNase。
使用无RNaseH活性(RNaseH-)的逆转录酶
逆转录酶催化RNA转化成cDNA。不管是M-MLV还是AMV,在本身的聚合酶活性之外,都具有内源RNaseH活性。RNaseH活性同聚合酶活性相互竞争RNA模板与DNA引物或cDNA延伸链间形成的杂合链,并降解RNA:DNA复合物中的RNA链。被RNaseH活性所降解的RNA模板不能再作为合成cDNA的有效底物,降低了cDNA合成的产量和长度。因此消除或大大降低逆转录酶的RNaseH活性将会大有裨益。
SuperScriptⅡ逆转录酶,RNaseH- 的MMLV逆转录酶及ThermoScript逆转录酶,RNaseH- 的 AMV,比MMLV和AMV得到更多量和更多全长的cDNA(图3)。RT-PCR灵敏度会受cDNA合成量的影响。ThermoScript比AMV的灵敏性强得多(图4)。RT-PCR产物的大小受限于逆转录酶合成cDNA的能力,尤其是克隆较大的cDNA时。同MMLV相比,SuperScripⅡ显著提高了长RT-PCR产物的产量(图5)。RNaseH- 的逆转录酶同时增加了热稳定性,所以反应可以在高于正常的37-42℃的温度下进行。
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图3 逆转录酶对cDNA第一链产量的影响
在建议的合成条件下,使用oligo(dT)引物和10μCi的[α- P]dCTP。第一链的总产量使用TCA沉淀法计算。全长cDNA使用在碱性琼脂糖胶上将大小分类的条带切除并计数的方法分析。

      
图4 逆转录酶对RT-PCR灵敏度的影响     图5 逆转录酶对长模板RT-PCR灵敏度的影响
以oligo(dT)为引物,使用ThermoScriptⅡ或AMV,在50℃下由Hela细胞总RNA合成cDNA。使用Platinum® Taq DNA聚合酶和人DNA聚合酶ε引物进行35个循环。     人tuberous scherosis ⅡmRNA(5.3kb)和人DNA聚合酶εmRNA的全长cDNA的合成由SuperScriptⅡ和MMLV催化。利用oligo(dT)为引物,由5μg Hela细胞总RNA合成cDNA。样品使用RNaseH处理,然后使用ELONGASE? Enzyme Mix将1/10的cDNA合成反应产物扩增35个循环。


RNaseH产生的障碍
RNaseH对第一链cDNA的影响。RNaseH在cDNA合成期间降解RNANA复合体中的RNA。红色箭头代表潜在的酶切位点。

提高逆转录保温温度
较高的保温温度有助于RNA二级结构的打开,增加了反应的产量。对于多数RNA模板,在没有缓冲液或盐的条件下,将RNA和引物在65℃保温,然后迅速置于冰上冷却,可以消除大多数二级结构,从而使引物可以结合。然而某些模板仍然会存在二级结构,即使热变性后也是如此。对这些困难模板的扩增可以使用ThermoScript逆转录酶,并将逆转录反应置于较高温度下进行以改善扩增(图6)。较高的保温温度也可以增加特异性,尤其是当使用基因特异性引物(GSP)进行cDNA合成时(见第三章)。如果使用GSP,确保引物的Tm值与预计的保温温度相同。不要在高于60℃时使用oligo(dT)和随机引物。随机引物需要在增加到60℃前在25℃保温10分钟。除了使用较高的逆转录温度外,还可以通过直接将RNA/引物混合物从65℃变性温度转到逆转录保温温度,并加入预热的2×的反应混合物提高特异性(cDNA热启动合成)。这种方法有助于防止较低温度时所发生的分子间碱基配对。使用PCR仪可以简化RT-PCR所需的多种温度切换。

图6 温度对不同模板的影响
使用ThermoScript或AMV,以18S rRNA基因特异性引物,由10ng大豆总RNA在所示温度合成cDNA。将1/10的cDNA反应产物使用高保真Platinum Taq DNA聚合酶进行40个PCR反应循环。

表2. 逆转录保温温度

Reverse Transcriptase   Incubation Temperature
AMV  37°C-45°C
M-MLV  37°C
SuperScript™II RT  37°C-50°C
ThermoScript™ RT  42°C-65°C
RNA在高于65℃时开始水解,对于≤1kb的RNA第一链合成温度可以为70℃,对于>1kb的RNA则需要<65℃。

Tth热稳定聚合酶在Mg 存在条件下 作为DNA聚合酶,在Mn 存在条件下作为RNA聚合酶。它可以在最高65℃条件下保温。然而,PCR过程中Mn 的存在会降低忠实性,这使得Tth聚合酶不太适合用于高精确度的扩增,如cDNA的克隆。另外,Tth的逆转录效率较低,这会降低灵敏度,而且,既然单个酶就可以进行逆转录和PCR,那么没有逆转录的对照反应就不能用来将cDNA的扩增产物同污染的基因组DNA的扩增产物区分开来。
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促进逆转录的添加剂
包括甘油和DMSO在内的添加剂加到第一链合成反应中,可以减低核酸双链的稳定并解开RNA二级结构,最多可以加入20%的甘油或10%的DMSO而不影响SuperScriptⅡ或MMLV的活性。AMV也可以耐受最多20%的甘油而不降低活性。为了在SuperScriptⅡ逆转录反应中最大限度提高RT-PCR的灵敏度,可以加入10%的甘油并在45℃保温。如果1/10的逆转录反应产物加入到PCR中,那甘油在扩增反应中的浓度为0.4%,这不足以抑制PCR。
RNaseH处理
在PCR之前使用RNaseH处理cDNA合成反应可以提高灵敏度。对于某些模板,据认为cDNA合成反应中的RNA会阻止扩增产物的结合,在这种情况下,RNaseH处理可以增加灵敏度。一般当扩增较长的全长cDNA目标模板时,RNaseH处理是必需的,比如低拷贝的tuberous scherosisⅡ(图7)。对这种困难模板,RNaseH的处理加强了SuperScriptⅡ或AMV合成的cDNA所产生的信号。对于多数RT-PCR反应,RNaseH处理是可选的,因为95℃保温的PCR变性步骤一般会将RNA:DNA复合物中的RNA水解掉。

图7 RNaseH处理对RT-PCR的影响
使用SuperScriptⅡ(S)、M-MLV(M)或AMV(A),由5μg Hela RNA合成人tuberous sclerosisⅡmRNA(5.3kb)的全长cDNA,反应产物的一半使用RnasH处理30分钟,使用ELONGASE Enzyme Mix对相当于起始RNA 0.5%的经处理及未处理逆转录产物进行35个循环的扩增。

小量RNA检测方法的提高
当仅有小量RNA时,RT-PCR尤其具有挑战性。在RNA分离过程中加入的作为载体的糖元有助于增加小量样品的产量。可以在加入Trizol的同时加入无RNase的糖元。糖元是水溶性的,可以同RNA保持在水相中以辅助随后的沉淀。对于小于50mg的组织或106个培养细胞的样品,无RNase糖元的建议浓度为250μg/ml。
在使用SuperScriptⅡ的逆转录反应中加入乙酰化BSA可以增加灵敏度(图8),而且对于小量RNA,减少SuperScriptⅡ的量并加入40单位的RnaseOut核酸酶抑制剂可以提高检测的水平。如果在RNA分离过程中使用了糖元,仍然建议在使用SuperScriptⅡ进行逆转录反应时加入BSA或RNase抑制剂。

图9 一步法RT-PCR的灵敏度
使用SuperScriptⅡOne-Step RT-PCR System从0,0.1,1,10,102,103pg Hela总RNA(分别为泳道1-6)扩增β-actin片段。反应在50℃保温30分钟;94℃2分钟;然后94℃15秒,55℃30秒,68℃90秒进行40个循环;随后在68℃保温5分钟。反应中包含200 nM正义和反义引物。

一步法同两步法RT-PCR的比较
两步法RT-PCR比较常见,在使用一个样品检测多个mRNA时比较有用。然而一步法RT-PCR具有其他优点(表3)。一步法RT-PCR在处理大量样品时易于操作,有助于减少残余污染,因为在cDNA合成和扩增之间不需要打开管盖。一步法可以得到更高的灵敏度,最低可以达到0.1pg总RNA,这是因为整个cDNA样品都被扩增(图9)。对于成功的一步法RT-PCR,一般使用反义的基因特异性引物起始cDNA合成。
表3. 一步法和两步法RT-PCR的比较
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