固相萃取

在看资料，接触到了固相萃取小柱，用于净化蜂蜜样品以提取蜂蜜样品中的硝基咪唑类物质。但是，我缺少理论背景知识，所以看不懂这样操作的原因，希望有人能帮忙解答。
取10g蜂蜜，用0.1mol/L的盐酸溶液10mL溶解蜂蜜样品（为何用盐酸溶解蜂蜜，而不用水）, 加磷酸氢二钾15g（为何加入磷酸氢二钾，是调PH吗？）, 振荡使其溶解，再用二氯甲烷20mL重复提取2次，盐酸20mL反萃（何为反萃，为何用盐酸反萃，作用是什么）,过阳离子交换柱，先用甲醇、水各5mL淋洗柱子，再用磷酸溶液( pH2)5mL活化（甲醇和水无法活化柱子吗？柱子是以硅胶为基质的），上样，然后用水3mL淋洗交换柱，除去样品中的水溶性物质，如糖类等，最后采用pH8.8的0. 5mol/L的磷酸盐缓冲液20mL洗脱（洗脱原理？），洗脱液经过二氯甲烷20mL萃取，旋转蒸干后定容，使用高效液相色谱仪测定。

硝基咪唑类物质在酸性条件下溶解性比较好；
调pH使目标化合物以分子状态存在，便于萃取；
反萃去除酸性性杂质；
离子交换柱与C18等不同，需要酸性环境进行活化；

吸附的是碱性物质，所以需要在碱性环境下才能交换出来，所谓离子交换原理。

这个处理方法是用于HPLC测定的。
我在想，如果用于HPLC-MS测定的话，有磷酸盐会不会对质谱有损坏？我查到磷酸盐好像对柱子不好，容易赌赛柱子，那对质谱有影响吗？还是只要流动相中不存在磷酸盐就不要紧？

质谱的特异性更强，也许不需要这么复杂的前处理。当然，如果你用这个方法，最后的盐最好脱去，再上质谱。

磷酸盐缓冲液又经过二氯甲烷萃取，旋蒸后再定容，最后进样的已经没磷酸盐了

20ml怎么旋蒸？

有50ml的旋蒸瓶的