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标题:[讨论贴]单细胞凝胶电泳技术及应用讨论

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[讨论贴]单细胞凝胶电泳技术及应用讨论

[讨论贴]单细胞凝胶电泳技术及应用讨论   



做了一年的单细胞凝胶电泳工作,也查阅了不少相关资料,随着经验的积累,总结了一些经验和教训,想和大家讨论,希望大家积极参与。
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一叶[使用道具]
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此方法在许多领域已经得到广泛应用,从放射医学的角度讲,此法还是有很大应用前景的,如:辐射生物剂量学,辐射的旁观效应,低剂量照射的适应性反映,凋亡细胞的观察等等。
本人的一些观点,很不成熟,敬请批评指正:
辐射生物剂量:此法适于照后短期内的剂量评价,中性条件优于碱性条件;
旁观效应:查阅了许多国外文献,尚无此方法观察旁观效应的研究报道,所以我采用此方法观察了1Gy照后的旁观效应,试验今天上午刚刚结束,结果待分析,粗略看,此法对于旁观效应还是很敏感的,此法的优势在于成本低,操作比较简单。
低剂量照射的适应性反映:本实验室的一个相关课题刚刚结提,论文在法医学与特种医学版的军事医学子版已有上传,感兴趣的可以去看。
凋亡细胞的观察:看过国外此法作出的凋亡细胞彗星图像,很漂亮,用CASP软件分析后,其曲线呈典型的双峰,而正常细胞为单峰。我的一些教训:观察凋亡细胞最好把电压、电流、和电泳时间均调低,否则,凋亡细胞中的DNA片断跑的太块,荧光下根本看不到凋亡细胞的尾巴。
注:我用的是中性条件,20V,200mA,20min, 凋亡细胞观察宜选用10V,100mA,10min。
朋友们如果有异议,请不吝赐教,也对我有所帮助。
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单细胞凝胶电泳技术应用非常广泛,本单位正在进行荷瘤小鼠放疗后的淋巴细胞DNA损伤研究,初步结果:大剂量放化疗前给予小剂量照射(分不同时间),动物的淋巴细胞彗星尾长、尾矩等指标试验组均小于对照组,证明该方法在放射医学的实用性。
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一叶 你好,本人也正要做这个实验,预实验做了两次,但什么都没看到,也不知道是什么问题,望指教。
铺3层胶,第一层100ul1%regular胶,50度烤干,第二层50000个细胞100ul0.5%低熔点胶,第三层100ul 0.5%低熔点胶。
裂解液:EDTA 100mM Nacl 2.5M Tris(10mM)pH10 1%TritonX-100 裂解 1小时
解旋液:EDTA1mM NaoH 300mM Ph>13 孵育20分钟。电泳40分钟。
染色: PI 50ug/ml染色15分钟。
结果是什么都看不到,好像一点都没染色。

另外,用软件分析能不能区分是单链损伤还是双链损伤?
敬请指教!
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回复 #4 BUK 的帖子

战友您好!非常欢迎您参加讨论!
首先,此试验的生物学原理目前还不是很清楚,Sighn和Olive这两个单细胞凝胶电泳的鼻祖首先提出的中性和碱性条件,中性条件检测双链断裂,而碱性条件检测单链断裂,有人曾提出这是为什么,我查阅了大量文献,国外文献没有具体的说明,国内文献更是人云亦云,所以,目前只能按照大家比较默认的:中性--双链,碱性--单链,这不是用软件来区分的,而是你的试验条件决定的,我看了您的裂解液ph10,所以检测结果应是单链断裂。
其次,您用的是三层三明治铺胶法,目前多数彗星试验已经少用此法,而是双层法甚至单层灌胶,有人担心双层或单层铺胶的脱胶问题,只要在凝胶的承载载体上做点文章,就解决了!我用的是双层铺胶法,我不知道您的第一层正常熔点胶为什么要烤干,是为了防治脱胶吗?我建议您采用双层法(卖瓜人不说自己的瓜苦,呵呵),这样在实验操作上可以节省时间,不必担心脱胶问题,我做了一年多了,自认为很成熟了,从来没有出现脱胶问题,(我不知道您用的凝胶承载体是什么?)。
第三,解旋20分钟应该没问题,但是我认为您的电泳时间过长,当然我不知道您的电泳条件(电压、电流、),我认为20分钟足够了,时间长了一是浪费时间,二是彗星图像不好,不利于分析。
第四,因为我用的EB染色,2ug/ml,效果很好,您用PI染色,我可能没有发言权,因为我不知道PI 的荧光激发光波长是多少,是否您的荧光条件不对?可以查查文献,这一点您对PI应该比我更了解吧。
第五,您的裂解时间有点短了,文献报道,最好不要少于1.5小时。
第六,我不知道您用的什么细胞,50000个细胞加入100ul0.5%低熔点胶,是不是细胞太多了,含细胞层的凝胶如果细胞密度过大,即使做出结果,彗星图像过于密集,头尾连接互相影响,无法分析。一般100ul0.5%低熔点胶中含400个细胞就足够了。
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回复 #4 BUK 的帖子

还有一点,差点忘了,我刚刚做的时候,不会用荧光显微镜,大开了自然光源,其实荧光激发根本不用开自然光源,画蛇添足。
只要荧光光路通畅了,物镜会出现特殊的荧光,只要波片上有荧光染色的细胞,它肯定跑不了!
另外,我不知道您用什么软件分析彗星图像,我用CASP,很好用,如果需要,我可以提供连接,网上可以下载的。
本版【图片仓库】子版有我做的彗星图像,感兴趣可以看看
cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=66&id=2729243&sty=1&tpg=1&age=0')
如有什么问题或我的回答有不妥之处,敬请指正。
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回复 #6 一叶 的帖子

非常感谢 一叶 老师,您的建议很有用。
1.我用的是HepG2细胞,我是看了一篇文献,上面说最大可以达到50000个细胞,因为第一次做的时候一个细胞都没见到,我以为是细胞数过少,所以我就加大细胞:( 根据您的指导,应该肯定可以排除这个可能性了。
2.关于电泳时间,我也是参考文献的,同时该篇文献上建议的电泳条件为 15V 400mA,但我们实验室的电泳仪电流上不去,只能到100mA,不过参照您的成功经验,这样的条件已经是可以了的 吧?
3.我烤胶也是按照同一篇文献的:( 主要也是为了防止脱胶的问题。因为我开始也试过不烤胶,裂解后捞起来时确实出现了脱胶的问题,所以还得向您请教一下,每层胶铺上以后时怎么处理的?另外,我用的载体是普通的显微镜观察用的载玻片,不知道行不行?
4.关于染色的问题,由于我们实验室这个实验做的不多,所以不敢用EB,怕污染了荧光显微镜,根据文献建议的几种燃料,我选择了PI,不过我现在想可能是浓度小了,昨天我上流式用PI单染时,用到了1mg/ml出来结果很漂亮,下面我也会考虑加到PI浓度试一下。不过也可能正如您的提示,我的裂解时间过短,我会首先拉长裂解时间看看的。另外,我配的各种溶液成分是对的吧?
5.关于单链,双链断裂的问题,因为我正是想通过这个实验看看我的样品对DNA的损伤情况,或者是说究竟有无损伤?(不知道我这要设计合不合理?敬请指正)如果这样可以的话,是不是我要分别做中性和碱性的实验,再进行判断?
6.我观察细胞的时候是把自然光关掉的,所以应该不是这个问题。关于数据分析的问题,是不是我用数码相机拍下了照片就可用CASP了?如果是就太好了,因为我正想去外边联系成像系统和分析软件呢。所以还麻烦您提供下载的链接。
再次感谢 一叶 老师,希望您能继续指导我的实验。
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SCGE的实验条件尚缺乏标准化,去年曾在美国召开专门会议讨论SCGE的标准化,这都是有文献可查的。
您的列解液应该不是问题,只要能够把细胞膜和核膜列解就可以了,1%TritonX-100 应该是临用时加的吧,另外我还加了DMSO,也是临用时加的。
我觉得您完全可以作中性和碱性两种,这样您的结果就更完美了。
三层铺胶法在铺胶后都要加盖片的,目的是使胶平整,凝胶固化后移去盖片,再铺另一层,普通波片表面比较光滑,容易脱胶,文献多用毛玻璃片,应该好一点,但也不能完全避免脱胶,我是将普通波片稍加改良,在波片上人为作出两个小电泳槽,是用很窄的玻璃条封上的,这就看你的功夫了,不过这可是一劳永逸的事,不会脱胶。
作出的彗星图像用数码相机拍摄后转入计算机,然后就可以用CASP了,我想你的数码相机已经准备好了吧,我用的是NIKON 4500,可以和荧光显微镜配套的。注意,CASP只读.tif扩展名的图像,如果你的相机拍摄的图像可以有.tif格式,就更好了,如果是.jpg格式,那还要在计算机中转换一下,不过很简单。目前国外有很多SCGE的自动成像分析系统,不过,价格也不菲,还是自己用相机拍的好。
另外,我还是为你担心一个问题,100ul胶含50000个细胞,出来的彗星图像可能密度太大,每个图像都互相影响,将来无法用CASP分析,除非您的胶铺的很薄,不过,就我 的经验,不会很薄吧。
下面就是CASP的链接,可以免费下载,使用也很简单,看看说明就可以了,祝你成功!

cuturl('http://sourceforge.net/project/showfiles.php?group_id=91972')
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BUK[使用道具]
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回复 #8 一叶 的帖子

感谢 一叶 老师的指点,我会把细胞数降下来的,我先做一下,有问题再向您请教。
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乌贼老弟[使用道具]
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我现在想问的是
1.彗星试验的重复性好吗?
2.不太明白彗星和流式的组合可以检测到什么?
3.我做的是碱性,是不是一定加肌氨酸钠,因为不是很好溶解?
4.裂解液,电泳液,中和液有没有必要新鲜配置,因为我的裂解液在冰箱中放置3天后会有结晶,但是加热后会溶解
5.我也是按照三层胶铺的,不过每次总是会有脱胶的现象,搞得挺难受的。6.验证试验的阳性对照应该选什么啊?
7.不同的细胞的裂解时间应该不同吧,想问的是假如想评价药物,(兽药)应该选什么细胞比较合适啊?我现在做的是vero,不过是看了别人的文献决定的,想听听大家的意见
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