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标题:[求助]关于结晶紫染液的配制--By G

ha111[使用道具]
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[求助]关于结晶紫染液的配制--By G



看到文献中提到结晶紫是0.05%的结晶紫溶在10%的甲醇中,在论坛上又查到的是溶在无水乙醇中。不知有谁知道这其中有什么讲究吗?
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yychen[使用道具]
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关注参考此贴:
cuturl('http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=66&id=1845824&tpg=1&ppg=1&sty=1&age=0#1845824')
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ladyhuahua[使用道具]
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结晶紫的染色用途:
1)组织中作细菌染色;
2)与茜素红作线粒体颗粒染色;
3)用于纤维素及神经胶质、类淀粉染色
4)属于核染色剂(碱性),活体染色剂。
配制结晶紫浓度文献上提的0.1%好像多一点的(我查到的),有在ddH2O或PBS里配的,也有在甲醇或乙醇里配的,在后二者中,结晶紫易于溶解,甲醇和乙醇都可以固定细胞用,二者无多大的区别(如果在ddH2O或PBS中,应该先用4%PFA固定细胞)。
我老板以前美国实验室寄过来一份方案,结晶紫是用纯的甲醇(或乙醇)配成0.5%浓度(母液),用之前以1(母液):4.5(生理盐水)再配成染液(配好后避光可以存放24小时)。如果不稀释的话,你可要当心你的96孔板上漫出来!
楼上的链接贴是我发的求助贴,我不知道有没有说话的力量,你就仅供参考吧!因为现在我的细胞染色结果老板认为不理想,我正考虑是不是用MTT来做!
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guagua[使用道具]
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看了你们的帖子了,我也感觉染色的深浅并不重要。可以用10%的醋酸提取细胞里的染料,在560nm测OD值,以此来反映黏附的细胞数量。谢谢你提供的配制方案!By the way,这母液能保存多少时间,也要避光吗?
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caihong[使用道具]
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on your bench ?do u mean it needn't avoid light?thank u!
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is2011[使用道具]
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那是不是储存液还得避光?无需冷藏吧?我要做transwell,用于染侵袭过matrigel的细胞。想先用甲醇固定,再用结晶紫染色。如果我用甲醇配结晶紫,那是不是可以固定染色一步完成?时间怎样控制?
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染液配好后避光放置5个月以后使用才是最好的,越久的愈好然出来的片子颜色才最好。来不及就买吧。
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831226[使用道具]
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8
 

PBS 中固定和染色都很简单,固定20分钟,染色5-10分钟就可以。我没有做过MATRIGEL,不知道在MATRIGEL里染色后你怎么把BACKGROUND去掉?OTHERWISE 黑乎乎你怎么COUNT细胞啊?
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is2011[使用道具]
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transwell不是有层膜吗?我要测的是侵袭到膜下面的细胞。我先固定染色,再把膜上面的matrigel连同没侵袭过去的cell用棉签擦干净,这样背景就清楚了。不知liubaoyin 说的“来不及就买”是什么意思?买现成的配好的?我已经买了固体的,还想明天配,后天用呢。希望效果不会太差!God bless me!
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orangecake[使用道具]
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你用过TRANSWELL么? 我在另一个贴子中提到过TRANSWELL做ASSAY时的人为因素很大,不知道你的意见如何?
我遇到的问题有: 1.如果你的细胞不很"粘",那么它的特异性迁移(对着某个化学信号梯度,通常是在TRANSWELL底部加血清或某种信号来造成方向性信号梯度)与它的随机性迁移的差距就很难区分开(我个人认为TRANSWELL检测时ASSAY组和对照组的差距在50%以上才有意义); 可一旦你用的细胞很"粘",往往迁移后细胞会在TRANSWELL的INSERT的外底部聚集,然后部分就掉到下面去了.掉下去的还好说,收集COUNT就可以了,可"爬"过去又"粘在"底部的细胞往往不是很匀的一层, 堆了好几层, 你根本无法直接COUNT.即使用胰酶反复处理后再收集到一起,都会由于操作繁琐而造成数据重复性极差! 2. 用TRANSWELL做ASSAY时, 一般地说, 在INSERT上加入的细胞量是下面能够"爬"过膜的细胞量的50-100倍, 就是说, 你上面加了一个MILLION的细胞, 最后你下面能有一两万个就很好了.因此控制上面的量就非常重要, 但往往操作起来非常困难.
(希望你的实验成功, 带给我一些惊喜!)
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