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标题:[讨论帖]细胞活性测定方法专题讨论

蒲公英[使用道具]
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[讨论帖]细胞活性测定方法专题讨论

细胞活性测定方法专题讨论




我们在实验过程中很多时候都要用到细胞活性测定技术,现在常用的细胞活性测定方法有台盼蓝染色法、克隆(集落)形成法、3H放射性同位素掺入法、MTT法等。其中MTT法以其快速简便,不需要特殊检测仪器、无放射性同位素、适合大批量检测的特点而得到广泛的应用。但MTT法形成的Formazan为水不溶性的,需要加有机溶剂溶解,由于在去上清操作时会有可能带走小部分的Formazan,故有时重复性略差。为了解决这个问题,研究人员又开发了很多种水溶性的四氮唑盐类:如XTT、CCK-8(WST-8)等。对于CCK-8,本版前阶段曾开展过免费试用活动,相信很多战友已使用过此种方法。

现在本版开展细胞活性测定方法专题讨论活动,请您以自己实验过程中的亲身经历对目前使用的细胞活性测定方法做一客观评价,可以介绍自己对各种细胞活性测定方法的理解,每种方法的优缺点,自己实验过程中的小技巧,实验中的经验教训,您所知的其它细胞活性测定方法等等,另外,鼓励对论坛中已有相关讨论整理总结,每个总结需要有个相对独立的主题。有可能的情况下,有理有据地加上一些自己的评价。
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xueyouzhang[使用道具]
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用流式细胞仪测定细胞活性的方法
细胞活性指标通常包括细胞膜对核酸染料的通透性,代谢活性,膜电位等

核酸染料有多种,如EB带有单个自由正电荷,能通过完整细胞膜。而
PI,TO—PRO—1,TO-PRO-3等等带一个有四铵基团和两个或两个以上正电荷的染料是不能通过完整细胞膜进入细胞内的。因而吸收了这些多电荷染料的细胞被认为是非活性的。另外,一些酸性染料,如上面提到的台盼兰,曙红等都是膜非通透性。

代谢活性是另一重要指标,它通过细胞内的酶的活性来判定。使用细胞某种酶的底物,它能通过(或是不能通过)完整细胞膜,在细胞内被酶切而产生荧光性,膜不通透性产物,能在细胞膜完好的细胞内存留,在细胞膜不完整的细胞内散失很快。通过检测荧光强度就可知细胞代谢活性。FDA(fluorescein diacetate)和CTC(5-cyano-2,3-ditolyl tetrazolium chloride)是常用的两种底物。前者虽然透过细胞膜的速度较慢,但它的产物基本不往外通透。后者经细胞内脱氢酶催化而具有荧光性,能提供细胞呼吸代谢系统活性和细胞膜完整性信息。

正常细胞的细胞膜两侧维持着一个胞内为负的膜电位为梯度,带正电的亲脂性染料,如Cyanines类能因电梯度而通过细胞的脂双层膜聚积在活细胞内,带负电的亲脂性染料如oxonols会被排除在外。不再维持着膜电位梯度的细胞里,则会吸收更多Oxonols类染料。

用流式细胞仪测量的方法优点是,灵敏,荧光强度精确定量,快速高通量的检测逐个细胞,可同时检测细胞的多个活性指标,提高可信度,结果具有统计意义。 缺点是,实验较MTT等复杂,费用较高,而且没有流式细胞仪的地方没法采用这种方法。
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caihong[使用道具]
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我最常用的就是台酚蓝法,就台酚蓝进行染色,死细胞着色,活细胞不着色,在显微镜下观察,数200个细胞。看其中染色的和不染色的,就可以求出细胞活性了。
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伊莎贝拉[使用道具]
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前几天刚做了MTT,可能是新手的原因,经验不足,做的不是很好,很苦恼,准备再做几次。下面就我实验当中遇到的一些问题给大家交流一下:我感觉MTT法受外界因素干绕挺大,我用的模型中有亚铁离子,药物是中药,两者都有颜色,而且还很重,单纯这两者没有细胞时 OD值就有很大的变化,所以我认为我的实验失败的原因与此有关(尽管试验当中要清洗)。试验当中还遇到一些其它的问题,我还没有找到原因,暂不叙述。我是刚刚做实验的新手,很多东西不懂,上面的观点也不知道对不对,但MTT法较简便宜行是很正确的,适合大众使用。就说这些吧,欢迎批评指正!
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mamamiya[使用道具]
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MTT法显色的条件是很重要的,这一点容易被我们所忽视,我总结了一下MTT显色反应的一些合适条件, 与大家一览.
1  pH 值对MTT 实验结果的影响:MTT 实验体系的pH 值是影响实验结果的另一重要因素。在偏碱性的环境中本底偏高,稳定性较差。随放置时间延长而升高;偏酸性试液 的实验结果比较稳定。
2  酚红和血清对MTT 实验方法的影响:酚红是一种pH 中性指示剂,血清是细胞生长必需的营养成份,两者都是细胞培养液的基本成份。酚红在pH7.0
以上试液中呈紫红色,在570 nm 有较大光吸收值。血清蛋白在有机溶剂中容易变性形成絮状沉淀,影响透光度。
3  异丙醇等用作Formazan 溶剂,无须酸化也能消除酚红的影响: 为了消除酚红对MTT 实验结果的影响,Mosmann (1983) 提出用酸化异丙醇作Formazan 溶
剂,酸化异丙醇可将酚红显示的紫红色转变为无色。Francois (1986) 认为酸化异丙醇溶解Formazan 改变了原光谱特性,降低灵敏度,提出改用无酚红的培养基。未经酸化的异丙醇在一定条件下也可以消除酚红的影响。异丙醇等有机溶剂本身为弱酸性 ,能够中和中性和弱碱性试剂,如RPMI21640 (pH7. 3) 。当异丙醇与RPMI - 1640 的溶量比达到1∶1 以上时即可将酚红的紫红色转变成无色。
4  细胞代谢酶存在部位对MTT 实验结果的影响:细胞线粒体产生的琥珀酸脱氢酶是细胞生长代谢产物,这种酶裂解MTT形成Formazan 是MTT实验方法的理论基础。琥珀酸脱氢酶的产生和分布规律与MTT检验方法的灵敏度和稳定性有很大关系
5  MTT使用浓度选择:在不饱和状态下,或是细胞密度一定,MTT 不饱和;或是MTT一定,细胞密度不饱和,Formazan 的生成量分别与MTT浓度和细胞分泌的酶活性量呈线性关系。达到饱和状态以后,两者为非线性关系。为了提高MTT 实验方法的灵敏度,在细胞密度一定的条件下,应该使用MTT饱和浓度。MTT的饱和浓度与细胞种类、细胞活力状态有关因此MTT 最佳使用浓度要视情况而定。
6  MTT的酶裂解反应时间选择:MTT 在细胞培养体系中被细胞内线粒体产生的琥珀酸脱氢酶裂解生成Formazan ,完成这一反应需要一定时间。MTT 裂解反应2.5h 反应已基本完成,3 h 反应相当完全,通常MTT实验应选择3 小时的反应时间。

附注(对MTT性质做一些补充说明,它的理化性质对其条件影响很大):
 MTT是一种黄色粉状物,溶于水性溶剂,也溶于有机溶剂,但在有机溶剂中的溶解力低于水性溶剂,常温下需要较长时间才能溶解。MTT 水溶液在pH 7.0 以下稳定,3~5周内不变性,在pH7.0 以上溶液中不太稳定 ,在异丙醇溶液中1 周内变色,2~3 周内变成兰紫色。MTT 溶液呈黄色,在410 nm 波长处有最大吸收峰,随波长增大吸收值很快下降,至500 nm处趋于最低值。MTT由酶裂解生成Formazan。Formazan 不溶于水性溶剂,易溶于有机溶剂。乙醇,丙醇,异丙醇,乙二醇甲醚,DMSO 等都是比较好的溶剂,Formazan 的有机溶液呈兰紫色 。细胞
增殖实验通常在聚苯乙烯培养板上进行,四氯化碳、10 %SDS 和二氧六环对培养板有溶蚀性,不宜使用。
DMSO 和SDS 对Formazan 也有较好的溶解性,但凝固点太高,10 ℃以下不能用; 丁醇等长碳链醇溶解Formazan 后与水相不混溶,呈分层液,不适合作Formazan溶剂。
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小鱼鱼[使用道具]
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我讲讲我用过的几种方法:
LDH释放法
酸脱氢酶(LDH)在胞浆内含量丰富,正常时不能通过细胞膜,当细胞受损伤或死亡时可释放到细胞外,此时细胞培养液中LDH活性与细胞死亡数目成正比,用比色法测定并与靶细胞对照孔LDH活性比较,可计算效应细胞对靶细胞的杀伤%。本法操作简便快捷,自然释放率低,可用于CTL及NK细胞活性测定及药物、化学物质或放射引起的细胞毒性,现已有LDH法测定CTL活性试剂盒(promega)。应注意较高浓度FCS中所含LDH可能干扰结果。

51铬(Cr)释放法,本法结果准确、重复性好,但也存在以下不足:①使用放射性的51Cr不利于安全操作及废物处置,且需特殊测定仪器;②51Cr自发释放率高,常因不同靶细胞标记效率变化差别大而影响结果判定;③51Cr半衰期(27.8天),无法用于需多次测定的动物试验;④细胞共育时间短而试验操作步骤多,不能在单个细胞水平进行测定。

荧光测定法:
如: alamarBlue一步荧光测定法
alamarBlue为活细胞代谢指示剂,易溶于水,进入细胞后经线粒体酶促还原产生荧光及颜色变化,可用以定量。具体测定方法是:在靶细胞孔(T)、效应细胞孔(E)和实验孔(T+E)各加alamarBlue,共育6~24h后用板式荧光测定仪测530nm(发射)/590nm(散射)波长荧光强度,将T及E孔荧光均值相加后减去实验孔(T+E)荧光均值,与T孔荧光均值比较即可计算CTL对靶细胞的溶解%。本法与51Cr释放法纺织厂较有以下特点:①特异性相当但灵敏度更高,重复性好,组内及组间差异很小。②使用方便,无需预先标记靶细胞及离心和洗涤步骤,适用于大批量样品的高准确性自动测定。③alamarBlue的使用浓度不影响细胞正常代谢及基因表达,可在无菌条件下测定后继续培养扩增细胞,有利于对培养细胞的连续监测及深入研究。④还可测定淋巴细胞增殖或化学物质的细胞毒性及细胞凋亡。⑤多种粘附或非粘附细胞系、细菌、真菌等可用作靶细胞,所需效应细胞数较少(3×105/孔即可)。⑥含胎牛血清(FCS)及酚红的培养液也不干扰测定结果。
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HP007[使用道具]
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我说说自己在用MTT法中的一些体会:
1、细胞数要尽可能的多,在细胞数足够多的情况下,可以避免一些上述园友提及的一些误差。
2、要有足够多的复孔,我一般每个剂量设8个复孔。我做了100多块板子后发现只要有足够的细胞数和复孔数,MTT法的重复性还是可以的。前几天测了几种物质对细胞活性的影响,基本上和我在2年前测得结果一致。
总之,我觉得统计学中关于试验设计中要有足够的样本数很重要,大样本数可以极大降低实验中的误差,增强实验结果的可靠性和重复性。
以上是我个人的实验体会,不对之处请大家批评指正。
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MTT的原理、步骤、技巧大家或许都已掌握。
MTT在国外的许多药物研发机构中,仍被用于大量药物的粗筛。
因为MTT法有许多优点:简便、快速、重复性好、价格低、所需细胞少、无放射性等等。在国内更是被大量应用于抗肿瘤药物的筛选,放疗、化疗敏感性的考察等方面,MTT的确是一种不错的实验方法。
我想说的是:但是如果想提高文章的档次,如果想投sci,还是建议大家不怕多花钱,采用灵敏的实验方法BrdU。
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我们课体组是在2004年使用的CCK-8试剂盒,检测原代分离的小鼠T淋巴细胞增殖。之前也使用过[3H]-TdR和MTT法,但由于原代T细胞的特点:1.细胞为悬浮;2.细胞体积小;3.原代细胞存活和增殖较细胞系困难。并且实验中涉及功能阻断,所以我用MTT的精确性不够高,多次用[3H]-TdR考虑到安全性不够好。就改用了CCK-8检测增殖。

我使用96孔细胞培养板,每孔4×105 个T细胞,PHA或ConA加入活化细胞后检测,每孔20μl,注意不要产生气泡,防止影响读板,因为这些小泡即使用针尖也无法消除。放回培养箱,4 h后取出,酶标仪550nm读板,虽然要求的是450nm,但我室没有安装这一波长的滤光片,所以就用了550nm,从结果上看趋势还是很好的。
保存:由于买的量大,所以为维持产品稳定性,先将不用的都保存在-20℃,并且使用过程中尽量避光,用完立即放回4℃。

另外,在培养贴壁细胞(如星形胶质细胞)的过程中,加CCK-8之前可先用水平式离心机去除培养基,加入含10%CCK-8的培养基,培养30 min后检测。这种方法在没有多道移液器,可能导致加入的CCK-8量不同的情况下可供使用。在加入CCK-8后不同时间检测,数值会有所升高,但总的趋势不会变。另外,要像做ELISA一样,在培养板上设立各种严格的对照组,每组3孔,以便去除本底,做出准确的变化曲线。
但所有细胞的活力要求必须要好,否则不增殖,测不出太大的变化。
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我做过的MTT 实验过程中,实验结果的稳定性及重复性较好,我主要是观察药物对肿瘤细胞的抑制作用,我做之前曾看了不少关于MTT的文章,有些文章就指出, 做MTT之前,要首先就你所要做的细胞,不加药的情况下,测定细胞作用的时间以及不同细胞数情况下,检测出其OD值,使你的OD值在0.75--1.25之间,也就是找出最优的时间点和细胞数。同样在实验过程中还要注意MTT避光,避免污染,培养基污染,以及细胞数过高过低现象及复孔(我实验过程中每浓度设置了10复孔),好多的细节需要注意,尽管是一个不太杂的实验。
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