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标题:[讨论帖]PBS配制

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[讨论帖]PBS配制



主要用于免疫组化染色时组织或细胞的漂洗,

0.05M储存液

Na2HPO4.12H2O--66.15g
NaH2PO4.H2O--6.66g
NaCl-----100.00g
KCl-----4.50g

加双蒸水至4500ml,用HCl或NaOH调PH到7.4即可。
使用时稀释5倍,即0.01M。
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多谢,但是,Na2HPO4.12H2O要6615g!有没有弄错?
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我的实验室PBS的配制:(克/升)
NaCl:8.00g
KCl:0.20g
Na2HPO4.12H2O:3.12g
KH2PO4:0.20g
配制时可加入0.35gNaHCO3,用于调pH值。
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请问,免疫组化清洗用的 PBS好象常见浓度是0.01M,你用0.05M的浓度是不是高了一点?我配的pBS好象没有钾离子,对不对?(只有Na2HPO4.12H2O和NaH2PO4.2H2O及NaCl,双蒸水,我是用0.2MPB50ml+NaCl8.5~9g+双蒸水至1000ml配置,pH为7.25~7.35),免疫组化的PBS与分子生物实验的PBS相同吗?另外请教一下,我用于冰冻切片(我做的是关于胶原方面的抗体免疫组化,只能用冰冻切片)的一抗稀释液有的老师说不能用PBS稀释,必须用TBS代替,不知是啥原因?我用SP方法参照中山公司的说明说,与过氧化氢酶底物相配的溶液中不应含有叠氮钠,可是你的一抗稀释液中有叠氮钠,我该如何办?由于我的实验周期较长(半年以上),所以我的一抗(冻干粉剂)一直没有稀释,不知你有何建议?请问我的抗体用你所说的一抗稀释液稀释到1ml后分装成10管100ul的小包装后,如果我要用的化,比如它的最佳稀释度为1:100我进一步是用你所说的抗体稀释液稀释还是用0.01MPBS稀释?谢谢!
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多谢,但是,Na2HPO4.12H2O要6615g!有没有弄错?

===========

sorry!
it's 66.15g
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免疫组化清洗用的 PBS好象常见浓度是0.01M,你用0.05M的浓度是不是高了一点?

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使用时稀释5倍,即0.01M" 0.05M是储存液!
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我配的pBS好象没有钾离子,对不对?

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严格的说我们这里的配方应该是KPBS,真正的PBS应该是您说的,不过它们在漂洗上的作用是基本相同的!
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免疫组化的PBS与分子生物实验的PBS相同吗?

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分子生物实验中好像TBS用的多一些。不过我们这里免疫组化与分子生物实验的PBS是相同的!
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一抗稀释液有的老师说不能用PBS稀释,必须用TBS代替,不知是啥原因?

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这个我也不太清楚,可能是您的抗体在tris.cl中更稳定吧?
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一抗(冻干粉剂)一直没有稀释,不知你有何建议?

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1。我认为您应该先用PBS等缓冲液稀释一抗的粉剂,稀释到100ul分装成10个小包装(每个10ul就可以,当然也可以按照您自己的设想进行),-20或-70度保存。
2。使用时用抗体稀释液稀释到应用浓度。
3。您的实验周期较长,但是您可以把片子集中起来(不同实验组,不同时间等等)进行一次染色。这样就可以不用在抗体稀释液中加叠氮钠。叠氮钠其实就是在抗体稀释液较长时间保存时起防腐作用的,如果您在短期内使用则完全可以不加!
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