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标题:[讨论帖]我的实验成长日记

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[讨论帖]我的实验成长日记




我现在开始做实验,感觉真是很多学问。以前看到别人摆弄一些瓶瓶罐罐,以为就是很简单的事情,到现在才明白原来经过了一番辛苦的设计之后,下来的等待实验结果的心情是很难耐得,能够在实验室里默默操作等待着一个实验结果,需要一定的悟性和定性。
这两天我就在重复着一些技术员的活。我们的研究所条件算是中等的,不算是高级。细胞培养的设备也是很齐全,但是细胞培养室、准备室等等不是分隔得很严格,进入培养室不用穿隔离衣。在超净台上操作也不用带口罩和帽子,只要用75%的酒精擦洗一下双手就行了。有大约4个超净台,但是在操作的间隙时不会开紫外灯消毒的,因为多人在培养室里。只有在每天的实验结束后,将紫外灯打开消毒。
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我知道在这个论坛里的很多人都和我一样才开始进入实验室,大家可以来共同交流一下自己的实验和实验中的一些难忘的片段。我只是觉得一天的实验下来,虽然好像没有干什么事情,却特别的疲惫。希望和大家交流一下体会和感悟,也算是对自己的实验经历的一些总结。
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我的导师对我说万事开头难,熟悉了实验的规程也就不再有什么害怕的了。花一个下午知道怎么配试剂也是一件有收获的事,我到现在还没有着手配试剂呢,有很多细节需要注意,到我亲手配完了,我也要总结一下试剂的配置方面的tips。希望我们共同进步,顺利完成实验!
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我看了rubyberry写的成长日记,我竟有同病相怜感,实验室的规范化我觉得实有必要,如查每个来实验室的人都从泡酸洗管子开始学起,那我们都不用做实验来完成课题了,而且我觉得初学者刚开始都做不好,花费了大量的人力,何不将实验室统一管理,专人负责实验器械的准备?我们实验室甚至连tip头和盒都要自己买,所有的所有都是自己准备。
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呵呵
最近在等待我的细胞株的到来,并且配置一些基本的试剂,培养基和胰酶什么的,我希望能够准备的全面好一点,这样遇到什么不如意和困难也不至于慌了阵脚。有人对我说在科研中最重要的是解决问题和最终的论文发表,我觉得很对,最终就是为了一篇成功的论文。
今天我听了一些博士的开题报告,认真分析了一下应该具备的科研思路。概括起来,就是创新性、聚焦点、纵深拓展。有的博士在选题方面谈的是口水题,几乎是重复前人的东西,只是用更先进的方法检测之;有的是铺开层面,只是在某一层面上测试多种基因或分子,在某种程度上来说可能很有必要,但让人眼花缭乱,不知所云。而且,仅仅着重一个层面,却没有纵深方面的拓展,既浪费了精力,又使得自己的课题的创新性和力度不够。
现在我是以一个初接触科研的硕士的眼光来看待问题,可能还是有偏颇之处。看到别人的不足,可以提醒自己,并且避免犯这种错误。在这里记下以警自己。同时谢谢战友们的关心,这让我更有信心继续自己的实验,不断完善。
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今天偶然要去-20度冰箱里拿东西,却发现自己前几天配好的冻存的培养液由于冻时体积膨胀,已经把分装的试剂瓶给撑破了!一些冰冻成块的培养液就在冰箱的最底处。好心痛!在冻存时我预计可能会有体积膨胀些,预留了15ml的空间,却想不到还是不够的。我想大概250ml的培养液在冻存时应该预留50ml的体积才对。
没办法,只好把培养液先放到4度的冰箱中先冻融,明天再重过滤分装一次。以后再也不犯这种低级错误了!
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7
 
都一样,我洗瓶子,配东西,中间还有别的事一耽搁,整整准备了两个星期,前天终于把细胞养上了,总算长得还行
前段时间准备东西,配东西,都有点走火入魔了,整天想这怎么配,那怎么配,灭菌灭好了没,可别污染了,Ph值到底调多少,唉,现在总算清楚了。。。。。。。。。
整天特别累,但一想还是在准备阶段,细胞都不知何时养上,就很郁闷。
都是新人,大家一起努力吧,加油:)
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is2011[使用道具]
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我的实验条件也不怎么样,关键是没钱,不过也还要做呀,第一次复苏的细胞没养好,已经倒掉了;昨天又复苏了一管,今天换液-无菌操作很关键,希望大家互相鼓励,互相帮助,一直坚持下去.
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呵呵,今天是一个喜出望外的日子,昨天收到我的细胞寄出的消息,本以为会明天到,想不到今天中午就已经收到了,真是开心。
细胞购自武汉中国典型培养物保藏中心,EMS的速度只需要一天半的时间到货。培养瓶充满了培养液,瓶口用封口胶密封了起来。
这些天一直看别人在做细胞培养,轮到自己的时候兴奋劲一过就开始有一点手足无措了起来。我按照无菌操作的规则,在超净台上将培养瓶中的培养液用吸管转移到离心管中。在倒置显微镜下观察,细胞的长势还是不错的,大约有50%confluence。估计放入CO2培养箱中,明天早上就可以传代了。
呵呵,大家一起加油啊
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真是没有料到,细胞传代后状态就不怎么好了。
我用的0.25%的Tripsin/EDTA消化。
取长满细胞的培养瓶,吸去培养液,用消化液冲洗了一下,立即吸掉冲洗液,加入大约1ml消化液,在细胞表面滚动了4-5圈后立即将消化液吸去。再加入大约1ml消化液,滚动4-5圈后吸掉消化液,仅余细胞表面少量消化液。
放到显微镜下观察,细胞仍然是贴壁的。我将培养瓶放入培养箱中,拧松瓶盖。三分钟后,取出培养瓶,在镜下观察细胞胞质回缩,间隙变大,有部分已经脱落。
我立即又进入无菌操作台,于培养瓶中加入少量培养液,在细胞表面来回流动了3-4圈,算是终止了胰蛋白酶的作用。吸去冲洗液后,加入了大约5ml培养液,在培养瓶中用吸管反复冲洗细胞贴壁的那一面,大约冲洗了大概有100下,后拧紧瓶盖,在显微镜下观察见大量细胞都已脱落,而且大部分是单个的细胞,即单细胞悬液是制作成功的。
随后我用一滴滴入血细胞计数池。余下的细胞悬液平均分于3个细胞培养瓶(加上传代用的细胞培养瓶)。每个培养瓶加入培养液使培养瓶中培养液的体积达到大约5ml。
镜下观察,细胞的接种密度应该是足够的。这里要说明的一下,我用的是原来寄送细胞过来时,细胞培养瓶中充满的培养液。因为我怕细胞不适应这里的培养环境,所以用了它原来的培养基。
像我培养的RL95-2细胞,是一种肿瘤细胞,因该在2-3小时内贴壁,第二天换液时应该全部贴壁才对。可是第二天去看时,细胞几乎仍然处于悬浮状态!这是怎么一回事呢?
我仔细考虑了我的操作,又向其他的师姐们询问。操作几乎没有什么明显的错误,细胞消化是也没有过渡。可是为什么细胞不贴壁呢?难道是不适应这里的培养条件?可是我用的是它原来的培养基阿!
师姐们的意见是:培养基的问题。在细胞寄送过来的时候,虽然培养液时充满培养瓶的,可是毕竟含了许多细胞代谢物,对于传代细胞有害。
也有师姐认为:在细胞传代过程中应该在制成细胞悬液后离心后去掉上清液,然后再加入新鲜的培养基制成细胞悬液,这样才能够彻底终止胰蛋白酶的作用。
现在的我也是六神无主。寄送来的细胞是多么珍贵,可是才传代一次就已经不景气了,我还没有冻存保种。想想真是很伤心,对于我的实验积极性是一个严重的打击。
同志们,给点参考意见?我怎么也想不通,怎么就这么不景气呢!都说肿瘤细胞株怎么养都不会死的。看来我是不太能够养这些小东西的。
今天看到一瓶又零星的贴壁,换了自己的培养基了,然后又加了一些血清。希望明天再去看的时候能够景气一点。
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