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标题:[求助]求助流式分析 FITC/PI双染 检测凋亡

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[求助]求助流式分析 FITC/PI双染 检测凋亡



各位同仁好,我最近在做FITC/PI双染检测凋亡,但是结果一直不理想,图也很难看。现在老板等着结果,比较急,希望懂得朋友帮忙分析下!非常感谢!!!
我用的是BD的试剂,下面是protocol:
1. Wash cells twice with cold PBS and then resuspend cells in 1X Binding Buffer at a concentration of 1 x 10^6 cells/ml.
2. Transfer 100 ?l of the solution (1 x 10^5 cells) to a 5 ml culture tube.
3. Add 5 ?l of FITC Annexin V and 5 ?l PI.
4. Gently vortex the cells and incubate for 15 min at RT (25°C) in the dark.
5. Add 400 ?l of 1X Binding Buffer to each tube. Analyze by flow cytometry within 1 hr.

注:离心是1000rpm,5min。消化用的是0.25%胰酶(不含EDTA),消化时间控制还算好。操作比较轻柔。
细胞株为胰岛细胞(属贴壁细胞),4是con,5 ,6为药物处理组,浓度递增。根据文献报道,浓度越高凋亡越多,但是现在结果是相反的,而且con的凋亡一直无法控制在5%以下(光镜下观察细胞状态佳)。根据光镜下观察,5 和6组的细胞形态有明显改变,细胞体积变小,但是流式结果却反应不出来。流式结果为早期凋亡是逐渐下降,晚期凋亡和坏死是逐渐上升的。本来是怀疑处理时间过长,导致进入晚期了,现在已经缩到40min了。
以下是最近刚做的一次流式结果,处理时间40min,


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下面是1h,浓度是一样的:
现在问题是:1:con组的图为什么看上去比药物组还要差,而且凋亡为什么会这么高,和我的操作有关?

2:如何将药物组的早期凋亡比例升上去?再缩短时间?还是降低浓度?

3:还有一个问题,我的NULL管在分群时,出现两个群。技术员怀疑细胞不纯,但是理论上是不会

的,我们买来的细胞株。难道又和我的操作有关?

希望各位朋友予以帮助,谢谢!


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ququer787[使用道具]
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个人观点:你有单染DAPI以及光镜下的图吗?这样可以结合流式一起说明。不知道对你有没有用
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fsdd817[使用道具]
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看Annexin V 和 PI单染的图,是不是没染好,看看是不是试剂盒有问题,实在不行增加点Annexin V或 PI的用量。
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你说的单染的图是指荧光补偿时做的单染的图吗?这个没拷出来。光镜下没有拍照,下次拍个照。
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单染的应该是没问题的,都看过,而且我这是新试剂。下次我把单染的图放上来。
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qumm1985[使用道具]
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贴壁细胞没有悬浮细胞好标记,首先细胞一定要养好,胰酶消化时间一定要控制好。你的细胞对照管早期凋亡都那么多,应该说操作不够细心。你处理过的细胞应该有早期凋亡,但是在这个基础上如果你的操作不细心,很可能累加打击,细胞进入晚期凋亡。
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lixi559[使用道具]
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与胰酶消化有关。加入胰酶后,镜下观察变圆后,立即加入含有较高浓度血清(20%)的培基中和胰酶,吹散细胞后,洗去胰酶,再按说明标记ann和pi,试试。
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我应用流式细胞仪大概有2年了,我觉得你的问题并不复杂,

凋亡率高低问题,个人认为应该和细胞浓度关系密切,建议你尝试将细胞浓度调低

药物组早期凋亡比例低,处理时间的长短并不是决定性因素,如果你将细胞浓度调低了后仍不见改善可能只有一种原因了,和你的第3个问题有关

你说细胞分群,你买的细胞株,理论上不可能出现这样的情况,那我建议你考虑一下细胞粘连的可能性,关键步骤在于胰酶消化的操作

总结下来只有两种可能,要不就是你胰酶消化的把握,包括时间和动作的轻柔度,如果排除这个问题的存在,就和细胞浓度有很大关系
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ALALA[使用道具]
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我应用流式细胞仪大概有2年了,我觉得你的问题并不复杂,

凋亡率高低问题,个人认为应该和细胞浓度关系密切,建议你尝试将细胞浓度调低

药物组早期凋亡比例低,处理时间的长短并不是决定性因素,如果你将细胞浓度调低了后仍不见改善可能只有一种原因了,和你的第3个问题有关

你说细胞分群,你买的细胞株,理论上不可能出现这样的情况,那我建议你考虑一下细胞粘连的可能性,关键步骤在于胰酶消化的操作

总结下来只有两种可能,要不就是你胰酶消化的把握,包括时间和动作的轻柔度,如果排除这个问题的存在,就和细胞浓度有很大关系

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我是在6cm dish铺了100万,培养48h后,做药物刺激,在进行流式检测。胰酶消化下来后,离心,再经过2次PBS洗涤,用500ul binding buffer吹匀,再吸取100ul染色。可能细胞密度是大了点,但是为什么密度大会造成这种情况?

下面是我新做的流式:


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