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标题:[求助]请问用RIPA裂解液提取蛋白,离心后为什么会出现...

+小生怕怕+[使用道具]
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[求助]请问用RIPA裂解液提取蛋白,离心后为什么会出现...



我在用RIPA裂解液提取肠上皮细胞蛋白,操作流程如下:
1、弃去六孔板中的培养基
2、用PBS冲洗三遍,最后一遍吸干净(PBS 4℃预冷)
3、裂解液200ul/孔,冰上30min,每5分钟震荡一次
4、细胞刮刮取(细胞刮用前无水乙醇浸泡,晾干后使用)
5、转移至EP管中,12000r/min,10min,4℃
6、取上清分装

就是在第六步,取上清时,发现里面有像鼻涕一样的物质出现。。。。
PS:
我使用的1ml裂解液中加入10ul的PMSF,
求各位大神指点,小弟感激不尽!!!
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49888[使用道具]
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我也出现过同样的问题,这种物质可能是细胞核内DNA的释放造成的,试试看下面的方法:

1.减少裂解液用量,同时刮细胞时尽量减少刮得次数使被机械性破坏的细胞减少

2.加入DNA酶

3.提完蛋白后,如发现黏黏的东西,把蛋白在95读孵育10分钟,然后立即冰浴5分钟

祝好运!
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mickeylin[使用道具]
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直接去超声就好了~~~应该是蛋白质~~
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wsll[使用道具]
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六孔板每个孔只加200μl?液面应该不能完全超过细胞层吧。可以试试下面的方法:

六孔板去两个孔的细胞,PBS洗三次,胰酶消化,取细胞转移至EP,PBS洗两次,再加入200μl的裂解液(含PMSF),手指轻弹混匀,冰上作用10-20min;4℃,12000rpm离心10min,收集上清即为细胞总蛋白。

可加入上样缓冲液跑SDS-PAGE。
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+小生怕怕+[使用道具]
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六孔板每个孔只加200μl?液面应该不能完全超过细胞层吧。可以试试下面的方法:

六孔板去两个孔的细胞,PBS洗三次,胰酶消化,取细胞转移至EP,PBS洗两次,再加入200μl的裂解液(含PMSF),手指轻弹混匀,冰上作用10-20min;4℃,12000rpm离心10min,收集上清即为细胞总蛋白。

可加入上样缓冲液跑SDS-PAGE。

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这样的话,岂不是不用种板也可以?直接消化培养瓶里的细胞就可以了?是不是这样?还有,我加200ul裂解液发现提得蛋白浓度比较低,不知道是不是可以降低裂解液的用量?请指点,多谢
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+小生怕怕+[使用道具]
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直接去超声就好了~~~应该是蛋白质~~

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我们实验室没有超声的。。。蛋白质为什么会这么粘稠?我都弃掉了。。。唉
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xingyi08[使用道具]
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很小的注射器反复吹打~~~~试试看~~注意温度~~再要不就用1*loading buffer提蛋白,配方忘了~~到网上找找吧~~ good luck~~
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qqq111[使用道具]
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六孔板一个孔的细胞用200μl裂解浓度应该不算低,反正WB是够了,当然用100μl应该也可以,只不过我没这么干过。不知道你要高浓度的蛋白做什么实验呢
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+小生怕怕+[使用道具]
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回复 #8 qqq111 的帖子

做western blot。。。。
我有一个同学实验室直接用100cm2的培养瓶提蛋白,用的方法是:

1、弃去培养瓶中培养基
2、用PBS冲洗三遍(PBS 4℃预冷)
3、加入1mlPBS,细胞刮刮取(细胞刮用前无水乙醇浸泡,晾干后使用)
4、转移至EP管中,1000r/min,10min
5、弃上清,加入1mlPBS,1000r/min,10min
6、加入裂解液80-100ul,冰上30min,每5分钟吹打一次
7、转移至EP管中,12000r/min,10min,4℃
8、取上清分装
这样一比较的话,我们之间用裂解液的量的差距也太大了。

有可能是目的蛋白的浓度不一样吧?我是初学者,还弄不很明白。

另外,我做western blot的条带清楚,但是比较浅,不知道是什么原因,请指点
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qqq111[使用道具]
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比较浅?是显色的问题吧。也可能是上样量少了点
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